Новости
хирургии
Журнал включен
в систему цитирования Scopus

2013 г. №2 Том 21

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

DOI: http://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2013.2.82   |  

С.А. ТОЧИЛО1, А.В. МАРОЧКОВ1, Н.О. МАКСЮТА2, Н.В. АКУЛИЧ2

ВЛИЯHИЕ РАЗЛИЧHЫХ ВАРИАHТОВ МHОГОКОМПОHЕHТHОЙ СБАЛАHСИРОВАHHОЙ АHЕСТЕЗИИ HА ЛЕЙКОЦИТАРHУЮ ФОРМУЛУ И ФАГОЦИТАРHУЮ АКТИВHОСТЬ КРОВИ ПАЦИЕHТОВ

УЗ «Могилевская областная больница» 1,
УО «Могилевский государственный университет им. А. А. Кулешова» 2,
Республика Беларусь

Цель. Провести анализ воздействия различных вариантов многокомпонентной сбалансированной анестезии с применением изофлурана/закиси азота/фентанила, севофлурана/закиси азота/фентанила и пропофола/фентанила на лейкоциты: их количество, состав лейкоцитарной формулы и фагоцитарную активность полиморфноядерных лейкоцитов.
Материал и методы. Анализ количества и функции лейкоцитов во время общей анестезии при лапароскопической холецистэктомии производился у 50 пациентов (3 мужчины и 47 женщин, в возрасте 51,5±12,4 лет, массой тела 84,5±18,4 кг). На нескольких этапах определяли изменение количества лейкоцитов, гранулоцитов и лимфоцитов, а также фагоцитарную активность полиморфноядерных лейкоцитов.
Результаты. Установлено, что при проведении многокомпонентной сбалансированной анестезии с применением севофлурана/закиси азота/фентанила и пропофола/фентанила количество лейкоцитов, гранулоцитов и лимфоцитов интраоперационно не отличается от исходного уровня, а проведение многокомпонентной сбалансированной анестезии с применением изофлурана/закиси азота/фентанила приводит к снижению во время операции количества лейкоцитов и гранулоцитов. В послеоперационном периоде отмечался лейкоцитоз, гранулоцитоз и относительная лимфопения. Фагоцитарная активность лейкоцитов во время общей анестезии снижалась. Интенсивность флуоресценции интраоперационно была значимо ниже при применении пропофола/фентанила по сравнению с применением севофлурана/закиси азота/фентанила.
Заключение. Изменения во время анестезии количества лейкоцитов, гранулоцитов и лимфоцитов наряду со стабильными параметрами гемодинамики, оксигенации, вентиляции, достаточной глубиной анестезии по данным контроля электроэнцефалографии и нейромышечного блока характеризуют адекватный уровень анестезиологической защиты пациентов от операционной травмы. Все три, изученные нами варианта многокомпонентной сбалансированной анестезии обладают способностью снижать фагоцитарный показатель, что должен учитывать анестезиолог при проведении анестезии.

Ключевые слова: общая анестезия, изофлуран, севофлуран, пропофол, фентанил, лейкоциты, фагоцитоз
с. 82 – 88 оригинального издания
Список литературы
  1. Bruce DL.Acute and chronic anaesthetic actions on leukocytes. Can Anaesth Soc J. 1973 Jan;20(1):55–63. Review.
  2. Зильбер АП. Влияние анестезии и операции на основные функции организма. Операционный стресс и пути его коррекции. В кн.: Бунятян АА, ред. Руководство по анестезиологии. Москва, РФ: Медицина; 1994. с. 314–39.
  3. Liu S, Wang B, Li S, Zhou Y, An L, Wang Y, Lv H, Zhang G, Fang F, Liu Z, Han R, Jiang T, Kang X. Immune cell populations decrease during craniotomy under general anesthesia. Anesth Analg. 2011 Sep;113(3):572–77.
  4. Schilling T, Kozian A, Senturk M, Huth C, Reinhold A, Hedenstierna G, Hachenberg T. Effects of volatile and intravenous anesthesia on the alveolar and systemic inflammatory response in thoracic surgical patients. Anesthesiology. 2011 Jul;115(1):65–74.
  5. Nicholson G, Hall GM. Effects of anaesthesia on the inflammatory response to injury. Curr Opin Anaesthesiol. 2011 Aug;24(4):370–74.
  6. Heller A, Heller S, Blecken S, Urbaschek R, Koch T. Effects of intravenous anesthetics on bacterial elimination in human blood in vitro. Acta Anaesthesiol Scand. 1998 May;42(5):518–26.
  7. Mikawa K, Akamatsu H, Nishina K, Shiga M, Maekawa N, Obara H, Niwa Y. Propofol inhibits human neutrophil functions. Anesth Analg. 1998 Sep;87(3):695–700.
  8. Weiss M, Birkhahn A, Krone M, Schneider EM. Do etomidate and propofol influence oxygen radical production of neutrophils? Immunopharmacol Immunotoxicol. 1996 May;18(2):291–307.
  9. Heine J, Jaeger K, Weingaertner N, Scheinichen D, Marx G, Piepenbrock S. Effects of different preparations of propofol, diazepam, and etomidate on human neutrophils in vitro. Acta Anaesthesiol Scand. 2001 Feb;45(2):213–20.
  10. Ji FH, Wang YL, Yang JP. Effects of propofol anesthesia and sevoflurane anesthesia on the differentiation of human T-helper cells during surgery. Chin Med J (Engl). 2011 Feb;124(4):525–29.
  11. Delogu G, Moretti S, Famularo G, Marcellini S, Santini G, Antonucci A, Marandola M, Signore L. Mitochondrial perturbations and oxidant stress in lymphocytes from patients undergoing surgery and general anesthesia. Arch Surg. 2001 Oct;136(10):1190–96.
  12. Urner M, Limbach LK, Herrmann IK, Muller-Edenborn B, Roth-Z'Graggen B, Schlicker A, Reyes L, Booy C, Hasler M, Stark WJ, Beck-Schimmer B. Fluorinated groups mediate the immunomodulatory effects of volatile anesthetics in acute cell injury. Am J Respir Cell Mol Biol. 2011 Sep;45(3):617–24.
  13. Heine J, Jaeger K, Osthaus A, Weingaertner N, Munte S, Piepenbrock S, Leuwer M. Anaesthesia with propofol decreases FMLP-induced neutrophil respiratory burst but not phagocytosis compared with isoflurane. Br J Anaesth. 2000 Sep;85(3):424–30.
  14. Erol A, Reisli R, Reisli I, Kara R, Otelcioglu S. Effects of desflurane, sevoflurane and propofol on phagocytosis and respiratory burst activity of human polymorphonuclear leucocytes in bronchoalveolar lavage. Eur J Anaesthesiol. 2009 Feb;26(2):150–54.
  15. Kim WH, Jin HS, Ko JS, Hahm TS, Lee SM, Cho HS, Kim MH. The effect of anesthetic techniques on neutrophil-to-lymphocyte ratio after laparoscopy-assisted vaginal hysterectomy. Acta Anaesthesiol Taiwan. 2011 Sep;49(3):83–7.
  16. Хаитов PM, Пинегин БВ. Изменение иммунитета при хирургических вмешательствах. Анналы Хирург Гепатологии. 1998;3:100–10.
  17. Schneemilch CE, Schilling T, Bank U. Effects of general anaesthesia on inflammation. Best Pract Res Clin Anaesthesiol. 2004 Sep;18(3):493–507.
  18. Ducharme G, Newell EW, Pinto C, Schlichter LC. Small-conductance Cl- channels contribute to volume regulation and phagocytosis in microglia. Eur J Neurosci. 2007 Oct;26(8):2119–30.
  19. Ince C, Coremans JM, Ypey DL, Leijh PC, Verveen AA, van Furth R.
  20. Phagocytosis by human macrophages is accompanied by changes in ionic channel currents. J Cell Biol. 1988 Jun;106(6):1873–78.
Адрес для корреспонденции:
212016, Республика Беларусь, г. Могилев, ул. Белыницкого-Бирули, д. 12, УЗ «Могилевская областная больница», реанимационно-анестезиологическое отделение,
е-mail: tsa80@inbox.ru,
Точило Сергей Анатольевич
Cведения об авторах:
Точило С.А., врач анестезиолог-реаниматолог УЗ «Могилевская областная больница».
Марочков А.В., д.м.н., заведующий отделением анестезиологии и реанимации УЗ «Могилевская областная больница».
Максюта Н.О, аспирант кафедры биологии УО «Могилевский государственный университет им. А.А. Кулешова».
Акулич Н.В., к.б.н., заведующий лабораторией экологической физиологии УО «Могилевский государственный университет им. А.А. Кулешова».
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007