Новости
хирургии
Журнал включен
в систему цитирования Scopus







2020 г. №3 Том 28

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.249   |  

К.С. КОБЕЛЕВ 1, Д.Д. ДОЛОТОВА 2, О.В. МИДЛЕHКО 1, Н.И. БЕЛОHОГОВ 1, В.И. МИДЛЕHКО 1

ИЗУЧЕHИЕ ФАКТОРОВ РИСКА ВТОРИЧHОГО УГЛУБЛЕHИЯ ДЕРМАЛЬHЫХ ОЖОГОВЫХ РАH

Ульяновский государственный университет 1, г. Ульяновск,
ООО «Гаммамед-Софт» 2, г. Москва,
Российская Федерация

Цель. Оценить частоту и выявить факторы риска развития вторичного углубления ожоговых ран при консервативном местном лечении дермальных ожогов повязками DDBM (dressing, dressing, dr. Breitman-dr. Menzul) в сравнении с лечением этих повреждений марлевыми повязками с растворами йодофоров.
Материал и методы. Проведено ретроспективное исследование медицинских карт 281 пациента с дермальными ожогами II степени. Анализировались две группы пациентов: основная (n=130), местное лечение ожоговых ран в которой осуществлялось с помощью пленочных повязок DDBM, и сравнения (n=151), где пациенты лечились марлевыми повязками с растворами йодофоров. Критериями включения в исследование были следующие: возраст 18 лет и старше, дермальные ожоги II ст. без струпа, давность получения травмы не более 3 суток, при сочетании дермальных ожогов II ст. с ожогами промежуточной глубины (II-III ст.) площадь ожога II ст. преобладала (МКБ-10). Для разработки прогностической модели вторичного углубления ожоговых ран была применена бинарная логистическая регрессия.
Результаты. Проведенный анализ показал, что при местном лечении дермальных ожогов пленочными повязками DDВM эпителизация наступает в среднем на 15-е [13; 17] сутки, а частота конверсии ожоговых ран снижается на 28% по сравнению с лечением марлевыми повязками с йодофорами. Выявлено, что индекс массы тела является прогностически значимым признаком: у пациентов с индексом массы тела ≥29,5кг/м2 шанс углубления дермального ожога резко возрастал. Использование комплекса таких предикторов как локализация ожоговых ран на задней поверхности тела и ягодицах, индекс массы тела и способ местного лечения, позволило на основе бинарной логистической регрессии разработать математическую модель, оценивающую вероятность развития вторичного углубления с чувствительностью 97,2% и специфичностью 99,5%.
Заключение. Выявлены преимущества использования повязок DDBM при сравнении с марлевыми повязками с растворами йодофоров. Построенная математическая модель вторичного углубления продемонстрировала высокую точность прогнозирования развития данного осложнения.

Ключевые слова: ожоговая конверсия, дермальные ожоги, влажное заживление раны, пленочные повязки, прогностическая модель
с. 249-257 оригинального издания
Список литературы
  1. Богданов СБ, Афаунова ОН, Бабичев РГ. Актуальность применения раневых покрытий при раннем хирургическом лечении пограничных ожогов на конечностях у детей. Мед Вестн Юга России. 2016;(3):27-30. doi: 10.21886/2219-8075-2016-3-27-30
  2. Singh V, Devgan L, Bhat S, Milner SM. The pathogenesis of burn wound conversion. Ann Plast Surg. 2007 Jul;59(1):109-15. doi: 10.1097/01.sap.0000252065.90759.e6
  3. Глуткин АВ, Ковальчук ВИ. Термический ожог кожи у детей раннего возраста (опыт эксперимента и клиники): монография. Гродно, РБ: ГрГМУ; 2016. 180 с. http://elib.grsmu.by/handle/files/861
  4. Lehnhardt M, Hartmann B, Reichert B, eds. Verbrennungschirurgie. Springer-Verlag Berlin Heidelberg; 2016. 501 р. doi: 10.1007/978-3-642-54444-6
  5. Войновский ЕА, Мензул ВА, Руденко ТГ, Юсупов ИЕ, Войновский АЕ, Шехтер АБ, Ковалев АС, Гуллер АЕ. Система лечения ожоговых ран в собственной жидкой среде: моногр. Москва, РФ: На боевом посту; 2015. 272 с. https://docplayer.ru/37857979-Sistema-lecheniya-ozhogovyh-ran-v-sobstvennoy-zhidkoy-srede-monografiya.html
  6. Общероссийская общественная организация «Объединение комбустиологов «Мир без ожогов». Ожоги термические и химические. Ожоги солнечные. Ожоги дыхательных путей. Клинические рекомендации [Электронный ресурс]. Москва, РФ; 2017 [дата обращения: 2019 Март 18]. 118 с. Available from: http://combustiolog.ru/wp-content/uploads/2013/07/Natsional-ny-e-klinicheskie-rekomendatsii-po-ozhogam-2017.pdf
  7. Barret-Nerin J, Herndon DN. Principles and practice of burn surgery. N.Y.: Marcel Dekker; 2005. 412 p. https://pdfs.semanticscholar.org/0636/8b2aeedd6c2db6a5ffcfa12a55241d8a64d1.pdf
  8. Соколов ВА, Ефименко НА, Адмакин АЛ, Петрачков СА, Степаненко АА. Ожоги мирного времени. Источники опасности. Клин Медицина. 2015;93(6):30-35. https://cyberleninka.ru/article/n/ozhogi-mirnogo-vremeni-istochniki-opasnosti
  9. Aksoy N, Arli S, Yigit O. A retrospective analysis of the burn injury patients records in the emergency department, an epidemiologic study. Emerg (Tehran). 2014 Summer;2(3):115-20. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4614574/
  10. Зиновьев ЕВ, Алов НВ, Апчел АВ, Васильева АГ, Якимов ДК. Эффективность антисептических растворов при лечении дермальных ожогов. Вестн Рос Воен-Мед Акад. 2014;(4):173-81. https://www.vmeda.org/wp-content/uploads/2016/pdf/173-181.pdf
  11. Арьев ТЯ. Термические поражения. Ленинград: Медицина; 1966. 702 с.
  12. Singer AJ, Towery H, McClain SA. Effect of tadalafil on reduction of necrosis in the ischemic zone in a rat comb burn model. Burns. 2018 Sep;44(6):1427-32. doi: 10.1016/j.burns.2018.05.013
  13. Widgerow AD, King K, Tocco-Tussardi I, Banyard DA, Chiang R, Awad A, Afzel H, Bhatnager S, Melkumyan S, Wirth G, Evans GR. The burn wound exudate-an under-utilized resource. Burns. 2015 Feb;41(1):11-17. doi: 10.1016/j.burns.2014.06.002
  14. Багненко СФ, Крылов КМ. Реальные возможности диагностики глубины поражения при ожогах. Скорая Мед Помощь. 2000;1(4):28-33. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36151251
Адрес для корреспонденции:
432071, Российская Федерация,
г. Ульяновск, ул. Рылеева, д. 30/30,
Ульяновский государственный университет,
Институт медицины, экологии
и физической культуры,
кафедра госпитальной хирургии,
анестезиологии, реаниматологии, урологии,
травматологии и ортопедии,
тел. моб.: +79603686624,
e-mail: kskobelev78@mail.ru,
Кобелев Константин Станиславович
Cведения об авторах:
Кобелев Константин Станиславович, аспирант кафедры госпитальной хирургии, анестезиологии, реаниматологии, урологии, травматологии и ортопедии, Институт медицины, экологии и физической культуры, Ульяновский государственный университет, врач травматолог-ортопед высшей категории, сотрудник ожогового отделения, Центральная городская клиническая больница, г. Ульяновск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-0817-8175
Долотова Дарья Дмитриевна, к.м.н., ведущий научный сотрудник, ООО «Гаммамед-Софт», г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-5538-1109
Мидленко Олег Владимирович, д.м.н., профессор кафедры госпитальной хирургии, анестезиологии, реаниматологии, урологии, травматологии и ортопедии, Институт медицины, экологии и физической культуры, Ульяновский государственный университет, г. Ульяновск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-8076-7145
Белоногов Николай Иванович, д.м.н., профессор кафедры госпитальной хирургии, анестезиологии, реаниматологии, урологии, травматологии и ортопедии, Институт медицины, экологии и физической культуры, Ульяновский государственный университет, г. Ульяновск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6064-9384
Мидленко Владимир Ильич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой госпитальной хирургии, анестезиологии, реаниматологии, урологии, травматологии, ортопедии, директор Института медицины, экологии и физической культуры, Ульяновский государственный университет, г. Ульяновск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-4358-8484
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.258   |  

А.Б. САHHИКОВ 1, 2, Е.В. ШАЙДАКОВ 3, В.М. ЕМЕЛЬЯHЕHКО 2, И.В. ДРОЗДОВА 1, Я.А. ДЕМИДЕHКО 1

О ВОЗМОЖHОСТИ ИСПОЛЬЗОВАHИЯ КЛЕЕВОЙ КОМПОЗИЦИИ «СУЛЬФАКРИЛАТ» ДЛЯ ОБЛИТЕРАЦИИ ВАРИКОЗHО ИЗМЕHЕHHЫХ ВЕH HИЖHИХ КОHЕЧHОСТЕЙ

Медицинский Центр «Палитра» 1, г. Владимир,
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России 2, г. Москва,
Институт мозга человека им. Н.П. Бехтеревой, РАН 3, г. Санкт-Петербург,
Российская Федерация

Цель. Провести исследования по использованию цианакрилатного клея «Сульфакрилат» для облитерации варикозных вен нижних конечностей у человека.
Материал и методы. С целью обоснования возможности использования клеевого соединения «Сульфакрилат» была произведена эндовазальная катетерная облитерация притоков и магистральных стволов большой подкожной вены на голени у 15 пациентов с варикозной болезнью (С2 по СЕАР). Клинически оценивалась выраженность болевого синдрома, наличие или отсутствие флебита и тромбофлебита, гиперпигментация, неврологические расстройства, аллергическая реакция. Ультразвуковой контроль проводился в различные сроки, начиная с 3-го дня до 6 месяцев. Гистологическое изучение морфологических изменений проводилось выборочно.
Результаты. У всех пациентов после введения клея «Сульфакрилат» присутствовала клиника умеренного флебита, без образования тромбов в просвете вены. Местной или общей аллергической реакции не отмечалось. Окклюзированные венозные сегменты начиная с 7-го дня пальпировались в виде тяжей умеренной плотности, без инфильтрации окружающих тканей. Ультразвуковое исследование показало при отсутствии кровотока постепенную биодеградацию клеевой полосы внутри вены с развитием полной облитерации просвета начиная с 4-го месяца. При гистологическом исследовании, начиная с 7-го дня, в стенке вены отмечалось постепенно купирующееся асептическое воспаление. Моноцитарная инфильтрация венозной стенки с образованием многоядерных клеток инородных тел присутствовала до времени полной биодеградации клея. Процесс диффузного разрастания соединительной ткани с наличием фибробластов со стороны субэндотелия и в средней оболочке наиболее активно отмечался в гистологическом материале от 90 до 120 дней с момента окклюзии. В срок 180 дней просвет окклюзированных «Сульфакрилатом» вен был полностью облитерирован зрелой соединительной тканью при отсутствии частиц клея, что свидетельствовало о его полной биодеградации.
Заключение. Проведенные исследования позволяют сделать вывод о потенциальной возможности использования клеевого соединения «Сульфакрилат» для проведения эндовазальной облитерации варикозных вен у человека.

Ключевые слова: цианакрилатная эмболизация, нетермальная облитерация, нетумесцентная облитерация, эндовазальная облитерация клеем, варикозная болезнь,
с. 258-267 оригинального издания
Список литературы
  1. Morrison N, Gibson K, McEnroe S, Goldman M, King T, Weiss R. Randomized trial comparing cyanoacrylate embolization and radiofrequency ablation for incompetent great saphenous veins (VeClose). J Vasc Surg. 2015 Apr;61(4):985-94. doi: 10.1016/j.jvs.2014.11.071
  2. Proebstle TM, Alm J, Dimitri S, Whiteley M, Lawson J, Cher D, Davies A. The European multicenter cohort study on cyanoacrylate embolization of refluxing great saphenous veins. J Vasc Surg Venous Lymphat Disord. 2015 Jan;3(1):2-7. doi: 10.1016/j.jvsv.2014.09.001
  3. Bozkurt AK, Ylmaz MF. A prospective comparison of a new cyanoacrylate glue and laser ablation for the treatment of venous insufficiency. Phlebology. 2016 Mar;31(1 Suppl):106-13. doi: 10.1177/0268355516632652
  4. Yasim A, Eroglu E, Bozoglan O. A new non-tumescent endovenous ablation method for varicose vein treatment: Early results of N-butyl cyanoacrylate (VariClose®). Phlebology. 2017 Apr;32(3):194-99. doi: 10.1177/0268355516638577
  5. Srinath SR, Sharma G. Review of non-thermal non-tumescent endovenous ablation using cyanoacrylate. Surgery. 2018;14(2):10. doi: 10.7438/1584-9341-14-2-10
  6. Шайдаков ЕВ, Мельцова АЖ, Порембская ОЯ, Кудинова ЕА. Опыт применения цианокрилатного клея при эндоваскулярном лечении варикозной болезни. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2017;23(4):62-66. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2017/4/9.htm
  7. Марченко ВТ, Прутовых НН, Толстиков ГА, Толстиков АГ. Медицинский клей «Сульфакрилат». Антибактериальная противовоспалительная клеевая композиция: рук для применения в хирург отраслях [Электронный ресурс]. Новосибирск, РФ; 2013. 80 c. Режим доступа: http://www.sulfakrilat.ru/upload/instruct_sulfakrilat.pdf
  8. Марченко ВТ, Шкурупий ВА. Морфологические особенности репаративной регенерации органов и тканей при использовании «Сульфакрилата» нового поколения. Бюл Эксперим Биологии и Медицины. 2004;137(2):231-36. https://elibrary.ru/item.asp?id=21236209
  9. Almeida JI, Javier JJ, Mackay E, Bautista C, Proebstle TM. First human use of cyanoacrylate adhesive for treatment of saphenous vein incompetence. J Vasc Surg Venous Lymphat Disord. 2013 Apr;1(2):174-80. doi: 10.1016/j.jvsv.2012.09.010
  10. Min RJ, Almeida JI, McLean DJ, Madsen M, Raabe R. Novel vein closure procedure using a proprietary cyanoacrylate adhesive: 30-day swine model results. Phlebology. 2012 Dec;27(8):398-403. doi: 10.1258/phleb.2011.011084
  11. Almeida JI, Min RJ, Raabe R, McLean DJ, Madsen M. Cyanoacrylate adhesive for the closure of truncal veins: 60-day swine model results. Vasc Endovascular Surg. 2011 Oct;45(7):631-35. doi: 10.1177/1538574411413938
  12. Almeida JI, Javier JJ, Mackay EG, Bautista C, Cher DJ, Proebstle TM. Two-year follow-up of first human use of cyanoacrylate adhesive for treatment of saphenous vein incompetence. Phlebology. 2014 Jul;30(6):397-404. doi: 10.1177/0268355514532455
  13. Eroglu E, Yasim A, Ari M, Ekerbicer H, Kocarslan A, Kabalci M, Acpayam M. Mid-term results in the treatment of varicose veins with N-butyl cyanoacrylate. Phlebology. 2017 Dec;32(10):665-69. doi: 10.1177/0268355517718761
  14. Zielinski A, Sweircz P. Are non-thermal, non-tumescent techniques more recommended? Endovenous treatment of saphenous veins reflux – methods and results overview and discussion. Phlebological Review. 2018;26(1):4-9. doi: 10.5114/pr.2018.76383
Адрес для корреспонденции:
600031, Российская Федерация,
г. Владимир, ул. Добросельская, 36 б,
Медицинский центр «Палитра»,
тел.: 8(999) 776-47-73,
e-mail: aliplast@mail.ru,
Санников Александр Борисович
Cведения об авторах:
Санников Александр Борисович, к.м.н., заведующий хирургическим отделением Медицинского центра «Палитра», г. Владимир, доцент кафедры дополнительного профессионального образования специалистов здравоохранения Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова Минздрава России, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-1792-2434
Дроздова Ирина Валерьевна, врач функциональной диагностики Медицинского центра «Палитра», г. Владимир, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-2430-053X
Демиденко Ярослав Анатольевич, к.м.н., главный врач Медицинского центра «Палитра», г. Владимир, Российская Федерация.
https://orcid.оrg/0000-0002-7944-1516
Шайдаков Евгений Владимирович, д.м.н., профессор, Институт мозга человека им. Н.П. Бехтеревой, РАН, г. Санкт-Петербург, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-7260-4968
Емельяненко Владимир Михайлович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой дополнительного профессионального образования специалистов здравоохранения Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова Минздрава России, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0909-1693

ТРАHСПЛАHТОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.268   |  

А.В. ВАТАЗИH, А.Б. ЗУЛЬКАРHАЕВ, В.А. СТЕПАHОВ

ПЕРСПЕКТИВHЫЙ ПОДХОД К ОЦЕHКЕ ТКАHЕВОЙ СОВМЕСТИМОСТИ ДОHОРА И РЕЦИПИЕHТА ПРИ ТРАHСПЛАHТАЦИИ ТРУПHЫХ ПОЧЕК

Московский областной научно-исследовательский клинический институт
им. М.Ф. Владимирского, г. Москва,
Российская Федерация

Цель. Провести многофакторный анализ влияния количества эпитопных несовпадений на выживаемость почечных трансплантатов.
Материал и методы. Проведено обсервационное ретроспективное когортное исследование, в которое было включено 824 совершеннолетних реципиента почечного трансплантата.
Результаты. Все пары донор-реципиент имели HLA-несовместимости (HLA MM). В скорректированной многофакторной модели значимыми факторами риска утраты были следующие: HLA MM (1– HR 1; 2– HR 1,24 [95% доверительный интервал – 95% ДИ 0,7; 2,15], р=0,344; 3 – HR 1,48 [95% ДИ 0,86; 2,33], р=0,251; 4– HR 1,88 [95% ДИ 1,32; 2,52], p<0,001; 5– HR 2,41 [95% ДИ 2; 2,93], p<0,001; 6– HR 2,98 [95% ДИ 2,59; 3,46]) p<0,001; продолжительность консервации HR 1,08 на каждый час [95% ДИ 1,02; 1,16], р=0,01; показатель панель-реактивных антител (ПРА) HR 1,24 на каждые 10% [95% ДИ 1,06; 1,58], р=0,01; но не тип донора, возраст и пол реципиента.
При включении в модель количества эпитопных несоответствий (EpMM), значимыми факторами риска были следующие: EpMM (<10 – HR 1; 10-19 – HR 1,71 [95%ДИ 1,09; 2,49], р=0,021; 20-29 – HR 2,11 [95% ДИ 1,59; 2,68], p<0,001; 30-39 – HR 2,4 [95% ДИ 1,96; 2,86], p<0,001; 40-49 – HR 2,59 [95% ДИ 2,17; 3,04], p<0,001; ≥50 – HR 2,71 [95% ДИ 2,31; 3,15]) p<0,001; показатель панель-реактивных антител (ПРА) HR 1,18 на каждые 10% [95% ДИ 1,09; 1,5], р=0,007; но не продолжительность консервации, тип донора, возраст и пол реципиента. При этом HLA MM уже не было значимым фактором риска утраты трансплантата HR 1,19 [95%ДИ 0,88; 1,55], р=0,451.
Заключение. Количество эпитопных несовпадений между фенотипом донора и фенотипом реципиента остается важным фактором долгосрочной выживаемости трансплантата даже с поправкой на количество HLA несовпадений, тип донора, уровень предсенсибилизации.

Ключевые слова: трансплантация почки, HLA, эпитоп, эплет, тканевая совместимость, выбор реципиента
с. 268-275 оригинального издания
Список литературы
  1. Williams RC, Opelz G, Weil EJ, McGarvey CJ, Chakkera HA. The Risk of Transplant Failure With HLA Mismatch in First Adult Kidney Allografts 2. Living Donors, Summary, Guide. Transplantation Direct. 2017 May;3(5):e152. doi: 10.1097/TXD.0000000000000664
  2. Посмертное донорство органов. Национальные клинические рекомендации [Электронный ресурс]. Рос трансплантол о-во; 2016 [дата доступа 2019 Авг 20]. 59 с. Режим доступа: http://transpl.ru/files/rto/possmertnoe_dnorstvo_organov.pdf
  3. Abramowicz D, Cochat P, Claas FH, Heemann U, Pascual J, Dudley C, Harden P, Hourmant M, Maggiore U, Salvadori M, Spasovski G, Squifflet JP, Steiger J, Torres A, Viklicky O, Zeier M, Vanholder R, Van Biesen W, Nagler E. European Renal Best Practice Guideline on kidney donor and recipient evaluation and perioperative care. Nephrol Dial Transplant. 2015 Nov;30(11):1790-97. doi: 10.1093/ndt/gfu216
  4. Shi X, Lv J, Han W, Zhong X, Xie X, Su B, Ding J. What is the impact of human leukocyte antigen mismatching on graft survival and mortality in renal transplantation? A meta-analysis of 23 cohort studies involving 486,608 recipients. BMC Nephrol. 2018 May 18;19(1):116. doi: 10.1186/s12882-018-0908-3
  5. Massie AB, Leanza J, Fahmy LM, Chow EK, Desai NM, Luo X, King EA, Bowring MG, Segev DL. A risk index for living donor kidney transplantation. Am J Transplant. 2016 Jul;16(7):2077-84. doi: 10.1111/ajt.13709
  6. Campos A, Malheiro J, Tafulo S, Santos S, Dias L, Martins S, Almeida M, Pedroso S, Henriques AC, Cabrita A. Increase of allosensitization after a kidney graft failure: Predictors and effect on retransplantation outcomes. Nefrologia. 2017 Jul-Aug;37(4):397-405. doi: 10.1016/j.nefro.2016.11.020 [Article in English, Spanish]
  7. Lim WH, Chadban SJ, Clayton P, Budgeon CA, Murray K, Campbell SB, Cohney S, Russ GR, McDonald SP. Human leukocyte antigen mismatches associated with increased risk of rejection, graft failure, and death independent of initial immunosuppression in renal transplant recipients. Clin Transplant. 2012 Jul-Aug;26(4):E428-37. doi: 10.1111/j.1399-0012.2012.01654.x
  8. Süsal C, Opelz G. Current role of human leukocyte antigen matching in kidney transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 2013 Aug;18(4):438-44. doi: 10.1097/MOT.0b013e3283636ddf
  9. Snell GD, Dausset J, Nathanson S. Histocompatibility. New York: Academic Press; 1976. 401 p.
  10. The National Marrow Donor Program Database [Internet] [cited 2018 May 12]. Available from: https://bioinformatics.bethematchclinical.org/
  11. The Allele Frequency Net Database [Internet] [cited 2018 May 12]. Available from: http://www.allelefrequencies.net
  12. HLA Epitope Registry Database [Internet] [cited 2018 May 12]. Available from: https://www.epregistry.com.br/
  13. Столяревич ЕС, Жилинская ТР, Артюхина ЛЮ, Ким ИГ, Зайденов ВА, Томилина НА. Морфологическая структура патологии почечного аллотрансплантата и ее влияние на отдаленный прогноз. Вестн Трансплантологии и Искусств Органов. 2018;20(1):45-54. doi: 10.15825/1995-1191-2018-1-45-54
  14. Campos A, Malheiro J, Tafulo S, Santos S, Dias L, Martins S, Almeida M, Pedroso S, Henriques AC, Cabrita A. Increase of allosensitization after a kidney graft failure: Predictors and effect on retransplantation outcomes. Nefrologia. 2017 Jul-Aug;37(4):397-405. doi: 10.1016/j.nefro.2016.11.020 [Article in English, Spanish]
  15. Jerne NK. Immunological speculations. Annu Rev Microbiol. 1960;14:341-58. doi: 10.1146/annurev.mi.14.100160.002013
  16. Lobashevsky AL, Senkbeil RW, Shoaf JL, Stephenson AK, Skelton SB, Burke RM, Deierhoi MH, Thomas JM. The number of amino acid residues mismatches correlates with flow cytometry crossmatching results in high PRA renal patients. Hum Immunol. 2002 May;63(5):364-74. doi: 10.1016/s0198-8859(02)00371-3
  17. Dankers MK, Witvliet MD, Roelen DL, de Lange P, Korfage N, Persijn GG, Duquesnoy R, Doxiadis II, Claas FH. The number of amino acid triplet differences between patient and donor is predictive for the antibody reactivity against mismatched human leukocyte antigens. Transplantation. 2004 Apr 27;77(8):1236-39. doi: 10.1097/01.tp.0000120385.03278.28
  18. Duquesnoy RJ, Takemoto S, de Lange P, Doxiadis II, Schreuder GM, Persijn GG, Claas FH. HLAmatchmaker: a molecularly based algorithm for histocompatibility determination. III. Effect of matching at the HLA-A,B amino acid triplet level on kidney transplant survival. Transplantation. 2003 Mar 27;75(6):884-89. doi: 10.1097/01.TP.0000055101.20821.AC
Адрес для корреспонденции:
129110, Российская Федерация,
Москва, ул. Щепкина, 61/2, корпус 6,
Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского, хирургическое отделение трансплантации почки,
тел. моб.: +7-916-705-98-99,
e-mail: 7059899@gmail.com,
Зулькарнаев Алексей Батыргараевич
Cведения об авторах:
Ватазин Андрей Владимирович, д.м.н., профессор, главный научный сотрудник хирургического отделения трансплантации почки, Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского, г. Москва, Российская Федерация.
https://0000-0001-8497-0693
Зулькарнаев Алексей Батыргараевич, д.м.н., доцент. ведущий научный сотрудник хирургического отделения трансплантации почки, Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского, г. Москва, Российская Федерация.
https://0000-0001-5405-7887
Степанов Вадим Анатольевич, к.м.н., старший научный сотрудник хирургического отделения трансплантации почки, Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского, г. Москва, Российская Федерация.
https://0000-0002-0881-0599

ТРАВМАТОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.276   |  

М.В. ЧЕПЕЛЕВА, Н.М. КЛЮШИH, А.М. ЕРМАКОВ, Е.И. КУЗHЕЦОВА

ПОПУЛЯЦИИ ЛИМФОЦИТОВ У ПАЦИЕHТОВ С ПЕРИПРОТЕЗHОЙ ИHФЕКЦИЕЙ ТАЗОБЕДРЕHHОГО СУСТАВА

Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии
имени академика Г.А. Илизарова Министерства здравоохранения России, г. Курган,
Российская Федерация

Цель. Изучить особенности клеточного иммунитета у пациентов с перипротезной инфекцией тазобедренного сустава в зависимости от тяжести течения заболевания и в соответствии с примененным впоследствии методом хирургического вмешательства.
Материал и методы. На дооперационном этапе изучены показатели клеточного иммунитета у 66 пациентов с перипротезной инфекцией тазобедренного сустава, которые были разделены на 3 группы: I группа (n=13) – дебридмент инфицированного сустава с заменой модульных компонентов эндопротеза; II группа (n=36) – установка артикулирующего спейсера; группа III (n=17) – резекционная артропластика. Исследование субпопуляций лимфоцитов проводилось методом лазерной проточной цитофлуориметрии.
Результаты. При сравнении показателей клеточного иммунитета в группах I, II, III со значениями контрольной группы было выявлено отсутствие субпопуляционных нарушений в группе I, повышение относительного содержания СD3+СD8+ при нормальном содержании СD3+СD4+ в группе II; повышение как относительного, так и абсолютного числа СD3+СD8+ при снижении количества СD3+СD4+ в группе III. Содержание активированных Т-лимфоцитов было повышенным во всех 3 группах. Различия между группами (I, II, III) с помощью критерия Краскела-Уоллиса были выявлены в отношении иммунорегуляторного индекса (CD4/CD3): (H – 6,67; р=0,035). Статистически значимые отличия имелись между I-III группами (p=0,012) и между II-III группами (p=0,011). Также межгрупповые отличия были выявлены в отношении СD3+СD4+ (%): (H – 22,57; р=0,0003). Статистически значимые отличия определялись между I-III группами (p=0,0002) и между II-III группами (p=0,0003).
Заключение. Изменение популяционного состава лимфоцитов является информативным маркером тяжести течения перипротезной инфекции. Исследование субпопуляций Т-лимфоцитов (Т-хелперов (СD3+СD4+) и цитотоксических Т-лимфоцитов (СD3+СD8+)) может быть использовано для выявления иммунокомпрометированных пациентов. Данные показатели могут применяться в качестве дополнительных диагностических тестов при выборе наиболее оптимального варианта хирургического лечения перипротезной инфекции.

Ключевые слова: перипротезная инфекция, тазобедренный сустав, клеточный иммунитет, Т-хелперы (СD3+СD4+), цитотоксические Т-лимфоциты (СD3+СD8+)
с. 276-283 оригинального издания
Список литературы
  1. Kurtz SM, Lau EC, Son MS, Chang ET, Zimmerli W, Parvizi J. Are We winning or losing the battle with periprosthetic joint infection: trends in periprosthetic joint infection and mortality risk for the medicare population. J Arthroplasty. 2018 Oct;33(10):3238-45. doi: 10.1016/j.arth.2018.05.042
  2. Gomes LSM. Early Diagnosis of periprosthetic joint infection of the hip-current status, advances, and perspectives. Rev Bras Ortop (Sao Paulo). 2019 Jul;54(4):368-76. Published online 2019 Aug 20. doi: 10.1055/s-0039-1693138
  3. Izakovicova P, Borens O, Trampuz A. Periprosthetic joint infection: current concepts and outlook. EFORT Open Rev. 2019 Jul;4(7):482-94. Published online 2019 Jul 29. doi: 10.1302/2058-5241.4.180092
  4. Abblitt WP, Chan EW, Shinar AA. Risk of Periprosthetic joint infection in patients with multiple arthroplasties. J Arthroplasty. 2018 Mar;33(3):840-43. doi: 10.1016/j.arth.2017.10.024
  5. Винклер Т, Трампуш А, Ренц Н, Перка К, Божкова СА. Классификация и алгоритм диагностики и лечения перипротезной инфекции тазобедренного сустава. Травматология и Ортопедия России. 2016;22 (1):33-45. doi: 10.21823/2311-2905-2016-0-1-33-45
  6. Saleh A, George J, Sultan AA, Samuel LT, Mont MA, Higuera-Rueda CA. The quality of diagnostic studies in periprosthetic joint infections: can we do better? J Arthroplasty. 2019 Nov;34(11):2737-43. doi: 10.1016/j.arth.2019.06.044
  7. Carli AV, Abdelbary H, Ahmadzai N, Cheng W, Shea B, Hutton B, Sniderman J, Philip Sanders BS, Esmaeilisaraji L, Skidmore B, Gauthier-Kwan OY, Bunting AC, Gauthier P, Crnic A, Logishetty K, Moher D, Fergusson D, Beaulé PE. Diagnostic accuracy of serum, synovial, and tissue testing for chronic periprosthetic joint infection after hip and knee replacements: a systematic review. J Bone Joint Surg Am. 2019 Apr 3;101(7):635-49. doi: 10.2106/JBJS.18.00632
  8. Saleh A, George J, Faour M, Klika AK, Higuera CA. Serum biomarkers in periprosthetic joint infections. Bone Joint Res. 2018 Jan;7(1):85-93. doi: 10.1302/2046-3758.71.BJR-2017-0323
  9. Gómez-García F, Espinoza-Mendoza RL. Whats new for the diagnosis of periprosthetic infections after the Philadelphia consensus? Acta Ortop Mex. 2019 Mar-Apr;33(2):127-35. [Article in Spanish; Abstract available in Spanish from the publisher]
  10. Чепелева МВ, Клюшин НМ, Ермаков АМ, Абабков ЮВ. Интерлейкин-6 в прогнозировании течения послеоперационного периода у пациентов с перипротезной инфекцией тазобедренного сустава. Сиб Науч Мед Журн. 2015;35(4):45-48. http://sibmed.net/article/360/8-4-2015.pdf
  11. Heim CE, Vidlak D, Odvody J, Hartman CW, Garvin KL, Kielian T. Human prosthetic joint infections are associated with myeloid-derived suppressor cells (MDSCs): Implications for infection persistence. J Orthop Res. 2018 Jun;36(6):1605-13. doi: 10.1002/jor.23806
  12. Seebach E, Kubatzky KF. Chronic implant-related bone infections-can immune modulation be a therapeutic strategy? Front Immunol. 2019;10:1724. Published online 2019 Jul 23. doi: 10.3389/fimmu.2019.01724
  13. Преображенский ПМ, Каземирский АВ, Гончаров МЮ. Современные взгляды на диагностику и лечение пациентов с перипротезной инфекцией после эндопротезирования коленного сустава. Гений Ортопедии. 2016;(3):94-104. doi: 10.18019/1028-4427-2016-3-94-104
  14. Lazarides AL, Vovos TJ, Reddy GB, Kildow BJ, Wellman SS, Jiranek WA, Seyler TM. Traditional laboratory markers hold low diagnostic utility for immunosuppressed patients with periprosthetic joint infections. J Arthroplasty. 2019 Jul;34(7):1441-45. doi: 10.1016/j.arth.2019.03.013
  15. Чуксина ЮЮ, Москалец ОВ, Яздовский ВВ, Ерёмин АВ, Ошкуков СВ. Клинико-иммунологические параллели при перипротезной инфекции после тотального эндопротезирования крупных суставов. Казан Мед Журн. 2016;97(4):514-18. doi: 10.17750/KMJ2016-514
Адрес для корреспонденции:
640014, Российская Федерация,
г. Курган, ул. М. Ульяновой, д. 6,
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии
им. академика Г.А. Илизарова
Министерства здравоохранения России,
тел. моб.: +7 912 838-42-49,
е-mail: citoz@mail.ru,
Кузнецова Елена Ивановна
Cведения об авторах:
Чепелева Марина Владимировна, к.м.н., старший научный сотрудник, научно-клиническая лаборатория микробиологии и иммунологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава РФ, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9731-115X
Клюшин Николай Михайлович, д.м.н., профессор, руководитель клиники гнойной остеологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава РФ, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-1601- 9713
Ермаков Артем Михайлович, к.м.н., врач травматолог-ортопед, клиника гнойной остеологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава РФ, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-5420-4637
Кузнецова Елена Ивановна, младший научный сотрудник, научно-клиническая лаборатория микробиологии и иммунологии, Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии имени академика Г.А. Илизарова Минздрава РФ, г. Курган, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-8022-5696

ОHКОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.284   |  

С.А. ЛУКЬЯHОВ 1, С.В. СЕРГИЙКО 1, С.Е. ТИТОВ 2, 3 , Ю.А. ВЕРЯСКИHА 2

ПЕРСПЕКТИВЫ ИСПОЛЬЗОВАHИЯ МОЛЕКУЛЯРHО-ГЕHЕТИЧЕСКИХ ПАHЕЛЕЙ В ДООПЕРАЦИОHHОЙ ДИФФЕРЕHЦИАЛЬHОЙ ДИАГHОСТИКЕ УЗЛОВЫХ ОБРАЗОВАHИЙ ЩИТОВИДHОЙ ЖЕЛЕЗЫ

Южно-Уральский государственный медицинский университет 1, г. Челябинск,
Институт молекулярной и клеточной биологии Сибирского отделения
Российской академии наук 2, г. Новосибирск,
Акционерное общество «Вектор-Бест» 3, г. Новосибирск,
Российская Федерация

Цель. Оценить возможность молекулярно-генетического классификатора в дооперационной диагностике рака щитовидной железы по окрашенным цитологическим препаратам, полученным при тонкоигольной аспирационной биопсии из узлов щитовидной железы.
Материал и методы. Сопоставлены результаты цитологических, гистологических и молекулярно-генетических исследований у 138 пациентов. Для проведения молекулярно-генетического исследования были отобраны окрашенные стекла с цитологическим материалом из узлов щитовидной железы пациентов, с дооперационными цитологическими заключениями, соответствующими по классификации Bethesda (2017) IV, V и VI группе. Все пациенты были оперированы в Областном центре эндокринной хирургии или Областном клиническом центре онкологии и ядерной медицины г. Челябинска, где им был установлен заключительный гистологический диагноз. На основании результатов молекулярно-генетического исследования препараты были разделены на 4 группы: доброкачественный узел; фолликулярная опухоль без маркеров злокачественности; папиллярный рак; фолликулярная опухоль с маркерами злокачественности. Результаты молекулярно-генетических исследований были сопоставлены с дооперационным цитологическим и послеоперационным гистологическим заключениями.
Результаты. При раке щитовидной железы совпадение результатов дооперационного молекулярно-генетического и послеоперационного гистологического исследований установлено в 53 (38,4%) случаях (истинно положительный результат), а расхождение – в 10 (7,2%) (ложноположительный результат). В 72 (52,2%) случаях при доброкачественных опухолях не было выявлено молекулярно-генетических маркеров злокачественности (истинно отрицательный результат), в 3 (2,2%) случаях рак был пропущен (ложноотрицательный результат).
Прогностическая ценность положительного результата молекулярно-генетического исследования составила 84,1%, прогностическая ценность отрицательного результата – 96%.
Заключение. Молекулярно-генетическое тестирование с использованием обычно приготовленных окрашенных мазков может с высокой точностью различать злокачественные и доброкачественные узлы щитовидной железы, что позволит повысить качество дооперационной дифференциальной диагностики узловых образований щитовидной железы и снизить количество необоснованных операций.

Ключевые слова: рак щитовидной железы, тонкоигольная аспирационная биопсия, молекулярно-генетическое исследование, микро РНК, классификация Bethesda
с. 284-289 оригинального издания
Список литературы
  1. Бельцевич ДГ, Ванушко ВЭ, Румянцев ПО, Мельниченко ГА, Кузнецов НС, Абросимов АЮ, Поляков ВГ, Мудунов АМ, Подвязников СО, Романов ИС, Поляков АП, Слепцов ИВ, Черников РА, Воробьев СЛ, Фадеев ВВ. Российские клинические рекомендации по диагностике и лечению высокодифференцированного рака щитовидной железы у взрослых, 2017 год. Эндокрин Хирургия. 2017;11(1):6-27. http://vidar.ru/Article.asp?fid=ESR_2017_1_6
  2. Ali S, Cibas E, eds. The Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology: Definitions, Criteria, and Explanatory Notes. 2nd ed. New York: Springer; 2018.
  3. Yang J, Schnadig V, Logrono R, Wasserman PG. Fine-needle aspiration of thyroid nodules: a study of 4703 patients with histologic and clinical correlations. Cancer. 2007 Oct 25;111(5):306-15. doi: 10.1002/cncr.22955
  4. Wormald R, Sheahan P, Rowley S, Rizkalla H, Toner M, Timon C. Hemithyroidectomy for benign thyroid disease: who needs follow-up for hypothyroidism? Clin Otolaryngol. 2008 Dec;33(6):587-91. doi: 10.1111/j.1749-4486.2008.01794.x
  5. Stoll SJ, Pitt SC, Liu J, Schaefer S, Sippel RS, Chen H. Thyroid hormone replacement after thyroid lobectomy. Surgery. 2009 Oct;146(4):554-8; discussion 558-60. doi: 10.1016/j.surg.2009.06.026
  6. Vargas-Salas S, Martínez JR, Urra S, Domínguez JM, Mena N, Uslar T, Lagos M, Henríquez M, González HE. Genetic testing for indeterminate thyroid cytology: review and meta-analysis. Endocr Relat Cancer. 2018 Mar;25(3):R163-R77. doi: 10.1530/ERC-17-0405
  7. Duick DS, Klopper JP, Diggans JC, Friedman L, Kennedy GC, Lanman RB, McIver B. The impact of benign gene expression classifier test results on the endocrinologist-patient decision to operate on patients with thyroid nodules with indeterminate fine-needle aspiration cytopathology. Thyroid. 2012 Oct;22(10):996-1001. doi: 10.1089/thy.2012.0180
  8. Titov SE, Ivanov MK, Karpinskaya EV, Tsivlikova EV, Shevchenko SP, Veryaskina YA, Akhmerova LG, Poloz TL, Klimova OA, Gulyaeva LF, Zhimulev IF, Kolesnikov NN. miRNA profiling, detection of BRAF V600E mutation and RET-PTC1 translocation in patients from Novosibirsk oblast (Russia) with different types of thyroid tumors. BMC Cancer. 2016 Mar 9;16:201. doi: 10.1186/s12885-016-2240-2
  9. Titov S, Demenkov PS, Lukyanov SA, Sergiyko SV, Katanyan GA, Veryaskina YA, Ivanov MK. Preoperative detection of malignancy in fine-needle aspiration cytology (FNAC) smears with indeterminate cytology (Bethesda III, IV) by a combined molecular classifier. J Clin Pathol. 2020 Mar 25:jclinpath-2020-206445. doi: 10.1136/jclinpath-2020-206445
  10. Cibas ES, Ali SZ. The Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology. Thyroid. 2009 Nov;19(11):1159-65. doi: 10.1089/thy.2009.0274
Адрес для корреспонденции:
454092, Российская Федерация,
г. Челябинск, ул. Воровского, 64,
Южно-Уральский государственный
медицинский университет,
кафедра общей и детской хирургии,
тел.: +7 950 744-45-95,
e-mail: 111lll@mail.ru,
Лукьянов Сергей Анатольевич
Cведения об авторах:
Лукьянов Сергей Анатольевич, к.м.н., ассистент, кафедра общей и детской хирургии, Южно-Уральский государственный медицинский университет, г. Челябинск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-5559-9872
Сергийко Сергей Владимирович, д.м.н., доцент, заведующий кафедрой общей и детской хирургии, Южно-Уральский государственный медицинский университет, г. Челябинск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6694-9030
Титов Сергей Евгеньевич, к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики института молекулярной и клеточной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, Акционерное общество «Вектор-Бест», г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-9401-5737
Веряскина Юлия Андреевна, к.б.н., научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики института молекулярной и клеточной биологии Сибирского отделения Российской академии наук, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3799-9407

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.290   |  

Д.П. МАРКЕВИЧ 1, А.В. МАРОЧКОВ 2

АHЕСТЕЗИЯ И СОДЕРЖАHИЕ КОРТИЗОЛА У ПАЦИЕHТОВ С ЧЕРЕПHО-МОЗГОВОЙ ТРАВМОЙ ПРИ КРАHИОТОМИИ

Могилевская городская больница скорой медицинской помощи 1,
Могилевская областная больница 2, г. Могилев,
Республика Беларусь

Цель. Провести анализ содержания кортизола в сыворотке крови во время операции и в раннем послеоперационном периоде у пациентов с черепно-мозговой травмой для оценки эффективности методов анестезиологического обеспечения краниотомий.
Материал и методы. В исследование включены 111 пациентов с черепно-мозговой травмой. Группу 1 составили 57 пациентов, которым при краниотомии применили комбинацию общей анестезии и проводниковых блокад нервов мягких тканей головы малыми объемами местного анестетика. Для блокад одного нерва использовали 0,4-2,0 мл местного анестетика. Группу 2 составили 54 пациента, которым применили общую анестезию. Во время операции и через 10-12 часов после краниотомии кортизол крови исследовали у 22 (38,6%) пациентов группы 1 и 20 (37%) пациентов группы 2.
Результаты. Во время краниотомии у пациентов с блокадами нервов мягких тканей головы содержание кортизола в крови на основном этапе операции и в конце вмешательства было меньше, чем у пациентов группы 2. Содержание кортизола на основном этапе операции в группе 1 было 136,4 (75; 325,4) нг/мл, а в группе 2 – 258,8 (161,7; 543,5) нг/мл, р=0,024. Содержание кортизола в конце операции в группе 1 было 119,6 (47,6; 327,2) нг/мл, а в группе 2 – 323,1 (156,9; 673,1) нг/мл, р=0,027. На исходном этапе и через 10-12 часов после операции различий в содержании кортизола между пациентами обеих групп не выявили.
Заключение. Содержание кортизола в крови было меньше у пациентов с черепно-мозговой травмой, которым применили комбинацию общей анестезии и блокад нервов скальпа, чем у пациентов, которым применили только общую анестезию. Блокады нервов мягких тканей головы малыми объемами местного анестетика у пациентов с черепно-мозговой травмой во время операции продемонстрировали высокую эффективность обезболивания.

Ключевые слова: черепно-мозговая травма, краниотомия, кортизол, общая анестезия, блокада нервов мягких тканей головы
с. 290-298 оригинального издания
Список литературы
  1. Шанько ЮГ, Сидорович РР, Танин АЛ, Наледько АН, Журавлев ВА. Эпидемиология черепно-мозговой травмы в Республике Беларусь. Междунар Неврол Журн. 2017;5(91):33-37. http://dx.doi.org/10.22141/2224-0713.5.91.2017.110854
  2. Kusmenkov T, Braunstein M, Schneider HJ, Bidlingmaier M, Prall WC, Flatz W, Boecker W, Bogner V. Initial free cortisol dynamics following blunt multiple trauma and traumatic brain injury: a clinical study. J Int Med Res. 2019 Mar;47(3):1185-94. doi: 10.1177/0300060518819603
  3. Haldar R, Kaushal A, Gupta D, Srivastava S, Singh PK. Pain following craniotomy: reassessment of the available options. Biomed Res Int. 2015;2015:509164. doi: 10.1155/2015/509164
  4. Citerio G, Pesenti A, Latini R, Masson S, Barlera S, Gaspari F, Franzosi MG; NeuroMorfeo Study Group. A multicentre, randomised, open-label, controlled trial evaluating equivalence of inhalational and intravenous anaesthesia during elective craniotomy. Eur J Anaesthesiol. 2012 Aug;29(8):371-79. doi: 10.1097/EJA.0b013e32835422db
  5. Дзядзько АМ, Болонкин ЛС, Минов АФ, Пискун АВ, Чугунова ОА, Катин МЛ, Брухацкий АА, Федорук АМ, Щерба АЕ. Сравнительная оценка симпатической блокады при грудной эпидуральной и билатеральной паравертебральной анестезиях при операциях высокой травматичности на органах верхнего этажа брюшной полости. Вестн Анестезиологии и Реаниматологии. 2015;12(1):34-40. doi: 10.21292/2078-5658-2015-12-1-34-40
  6. Papangelou A, Radzik BR, Smith T, Gottschalk A. A review of scalp blockade for cranial surgery. J Clin Anesth. 2013 Mar;25(2):150-59. doi: 10.1016/j.jclinane.2012.06.024
  7. Dimopoulou I, Tsagarakis S. Hypothalamic-pituitary dysfunction in critically ill patients with traumatic and nontraumatic brain injury. Intensive Care Med. 2005 Aug;31(8):1020-28. doi: 10.1007/s00134-005-2689-y
  8. Klose M, Feldt-Rasmussen U. Hypopituitarism in Traumatic Brain Injury-A Critical Note. J Clin Med. 2015 Jul 14;4(7):1480-97. doi: 10.3390/jcm4071480
  9. Mirzaie B, Mohajeri-Tehrani MR, Annabestani Z, Shahrzad MK, Mohseni S, Heshmat R, Afshani HR, Meybodi HR, Larijani B. Traumatic brain injury and adrenal insufficiency: morning cortisol and cosyntropin stimulation tests. Arch Med Sci. 2013 Feb 21;9(1):68-73. doi: 10.5114/aoms.2012.30833
  10. Llompart-Pou JA, Raurich JM, Pérez-Bárcena J, Barceló A, Ibáñez J, Ayestarán JI. Acute Hypothalamic-pituitary-adrenal response in traumatic brain injury with and without extracerebral trauma. Neurocrit Care. 2008;9(2):230-36. doi: 10.1007/s12028-008-9115-6
  11. Кувшинов МВ, Обрядина АП. Актуальные проблемы сравнения результатов количественных иммуноферментных тестов. Клин Лаб Диагностика. 2012;(4):32-35. https://cyberleninka.ru/article/n/aktualnye-problemy-sravneniya-rezultatov-kolichestvennyh-immunofermentnyh-testov
  12. Canakci E, Unal D, Yildirim T, Yilmaz A. Our scalp block results in craniotomy cases. J Anest & Inten Care Med. 2017;2(4):555592. doi: 10.19080/JAICM.2017.02.555592
  13. Can BO, Bilgin H. Effects of scalp block with bupivacaine versus levobupivacaine on haemodynamic response to head pinning and comparative efficacies in postoperative analgesia: A randomized controlled trial. J Int Med Res. 2017 Apr;45(2):439-50. doi: 10.1177/0300060516665752
  14. Ayoub C, Girard F, Boudreault D, Chouinard P, Ruel M, Moumdjian R. A comparison between scalp nerve block and morphine for transitional analgesia after remifentanil-based anesthesia in neurosurgery. Anesth Analg. 2006 Nov;103(5):1237-40. doi: 10.1213/01.ane.0000244319.51957.9f
  15. Geze S, Yilmaz AA, Tuzuner F. The effect of scalp block and local infiltration on the haemodynamic and stress response to skull-pin placement for craniotomy. Eur J Anaesthesiol. 2009 Apr;26(4):298-303. doi: 10.1097/EJA.0b013e32831aedb2
Адрес для корреспонденции:
212030, Республика Беларусь,
г. Могилев, ул. Боткина, д. 2,
Могилевская городская больница
скорой медицинской помощи,
отделение анестезиологии и реанимации,
тел./факс: +375(222) 22-16-26,
e-mail: snyter1977@gmail.com,
Маркевич Денис Петрович
Cведения об авторах:
Маркевич Денис Петрович, заведующий отделением анестезиологии и реанимации, Могилевская городская больница скорой медицинской помощи, г. Могилев, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-1117-3877
Марочков Алексей Владимирович, д.м.н., профессор, врач анестезиолог-реаниматолог, отделение анестезиологии и реанимации, Могилевская областная больница, г. Могилев, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0001-5092-8315

НЕЙРОХИРУРГИЯ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.299   |  

Я.В. ЦЫМБАЛЮК 1, В.И. ЦЫМБАЛЮК 1, 2, И.Б. ТРЕТЯК 1, В.В. МЕДВЕДЕВ 2, В.Г. ГУРЬЯHОВ 2, А.А. ГАЦКИЙ 1, Т.И. ПЕТРИВ 1

СРАВHИТЕЛЬHЫЙ АHАЛИЗ РАЗЛИЧHЫХ ВИДОВ HЕВРОТИЗАЦИИ КАК МЕТОДА ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕHИЯ ПЕРИФЕРИЧЕСКОГО ПАРЕЗА ЛИЦЕВОГО HЕРВА

Институт нейрохирургии им. акад. А.П. Ромоданова НАМН Украины 1,
Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца 2,
г. Киев, Украина

Цель. Определение оптимального вида невротизации лицевого нерва у пациентов с последствиями его травматического повреждения.
Материал и методы. Проанализированы результаты лечения 172 пациентов с повреждением лицевого нерва, которым была проведена невротизация различными нервами-донорами. Женщин было 97 (56,4%), мужчин – 75 (43,6%). Медиана возраста составляла 38 лет, межквартильный интервал – 29-50 лет. Наиболее частой причиной повреждения лицевого нерва было удаление опухолей задней черепной ямки – 123 пациента (71,5%). Были использованы различные виды реконструктивных вмешательств: невротизация лицевого нерва ветвями добавочного нерва к кивательной мышце – 87 пациентов, невротизация лицевого нерва ветвью дополнительного нерва к кивательной мышце и нисходящей ветвью подъязычного нерва – 62 пациента, добавочным нервом – 10 пациентов, нисходящей ветвью подъязычного нерва – 10 пациентов, передними двигательными ветвями C2-C3 – 3 пациента.
Изучали ближайшие и отдаленные результаты лечения. Пациентам проводили контрольный осмотр и ЭНМГ-исследование не ранее, чем через 4 месяца после операции. Отдаленные результаты изучали в сроки не ранее 12 месяцев и до 24 месяцев после операции путем повторных неврологических осмотров и дополнительных электрофизиологических методов исследования.
Результаты. Во всех случаях достигнут положительный результат. У 147 (85,4%) из 172 пациентов наблюдалось восстановление функции лицевого нерва по шкале House-Brackmann до II-III позиций. Наилучшие результаты были достигнуты при невротизации ветвями добавочного нерва и при одновременном использовании нескольких нервов-доноров (p<0,001).
Заключение. Использование в качестве доноров кивательных ветвей добавочного нерва обеспечивает восстановление функции лицевого нерва до уровня II-III по шкале House-Brackmann у 89,7% пациентов и по результативности не отличается от технически более сложной и прогностически менее благоприятной невротизации лицевого нерва нисходящей ветвью подъязычного и ветвью добавочного нерва.

Ключевые слова: невротизация, лицевой нерв, нерв-донор, электронейромиография, хирургическое лечение
с. 299-308 оригинального издания
Список литературы
  1. Spencer CR, Irving RM. Causes and management of facial nerve palsy. Br J Hosp Med (Lond). 2016 Dec 2;77(12):686-91. doi: 10.12968/hmed.2016.77.12.686
  2. Reich SG. Bell’s Palsy. Continuum (Minneap Minn). 2017 Apr;23(2, Selected Topics in Outpatient Neurology):447-66. doi: 10.1212/CON.0000000000000447
  3. Zhang W, Xu L, Luo T, Wu F, Zhao B, Li X. The etiology of Bell’s palsy: a review. J Neurol. 2019 Mar 28. doi: 10.1007/s00415-019-09282-4. Online ahead of print.
  4. Chang YS, Choi JE, Kim SW, Baek SY, Cho YS. Prevalence and associated factors of facial palsy and lifestyle characteristics: data from the Korean National Health and Nutrition Examination Survey 2010-2012. BMJ Open. 2016 Nov 9;6(11):e012628. doi: 10.1136/bmjopen-2016-012628
  5. Gordin E, Lee TS, Ducic Y, Arnaoutakis D. Facial nerve trauma: evaluation and considerations in management. Craniomaxillofac Trauma Reconstr. 2015 Mar;8(1):1-13. doi: 10.1055/s-0034-1372522
  6. Salles AG, da Costa EF, Ferreira MC, Remigio AF, Moraes LB, Gemperli R. Epidemiologic Overview of Synkinesis in 353 Patients with Longstanding Facial Paralysis under Treatment with Botulinum Toxin for 11 Years. Plast Reconstr Surg. 2015 Dec;136(6):1289-98. doi: 10.1097/PRS.0000000000001802
  7. Cooper L, Lui M, Nduka C. Botulinum toxin treatment for facial palsy: A systematic review. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2017 Jun;70(6):833-41. doi: 10.1016/j.bjps.2017.01.009
  8. Jowett N, Hadlock TA. A Contemporary Approach to Facial Reanimation. JAMA Facial Plast Surg. 2015 Jul-Aug;17(4):293-300. doi: 10.1001/jamafacial.2015.0399
  9. Robinson MW, Baiungo J. Facial Rehabilitation: Evaluation and Treatment Strategies for the Patient with Facial Palsy. Otolaryngol Clin North Am. 2018 Dec;51(6):1151-67. doi: 10.1016/j.otc.2018.07.011
  10. Socolovsky M, Páez MD, Masi GD, Molina G, Fernández E. Bell’s palsy and partial hypoglossal to facial nerve transfer: Case presentation and literature review. Surg Neurol Int. 2012;3:46. doi: 10.4103/2152-7806.95391
  11. Azizzadeh B, Irvine LE, Diels J, Slattery WH, Massry GG, Larian B, Riedler KL, Peng GL. Modified Selective Neurectomy for the Treatment of Post-Facial Paralysis Synkinesis. Plast Reconstr Surg. 2019 May;143(5):1483-96. doi: 10.1097/PRS.0000000000005590
  12. House JW, Brackmann DE. Facial nerve grading system. Otolaryngol Head Neck Surg. 1985 Apr;93(2):146-47. doi: 10.1177/019459988509300202
  13. Sforza C, Ulaj E, Gibelli DM, Allevi F, Pucciarelli V, Tarabbia F, Ciprandi D, Dell’Aversana Orabona G, Dolci C, Biglioli F. Three-dimensional superimposition for patients with facial palsy: an innovative method for assessing the success of facial reanimation procedures. Br J Oral Maxillofac Surg. 2018 Jan;56(1):3-7. doi: 10.1016/j.bjoms.2017.11.015
  14. Третьякова АІ. Клініко-електронейроміографічна діагностика уражень лицьового нерва, критерії прогнозування ефективності лікування. Укр Вісн Психоневрології. 2002;10(2):79-81.
  15. Kimura M, Nakagawa I, Niinai H, Hamada H, Sakai A, Yasuuji M. Evaluation with blink reflex of bilateral facial palsy. Masui. 2000 Feb;49(2):159-62. [Article in Japanese]
  16. Kanda Y. Investigation of the freely available easy-to-use software ‘EZR’ for medical statistics. Bone Marrow Transplant. 2013 Mar;48(3):452-58. doi: 10.1038/bmt.2012.244
  17. Неробеев АИ, Плотников НА. Восстановительная хирургия мягких тканей челюстно-лицевой области: рук для врачей. Москва, РФ: Медицина; 1997. 228 с. http://padabum.com/d.php?id=51328
Адрес для корреспонденции:
04050, Украина,
г. Киев, ул. Платона Майбороды, д. 32,
Институт нейрохирургии
им. акад. А.П. Ромоданова НАМН Украины,
отделение восстановительной нейрохирургии,
тел.: +38 (044) 483-12-53,
e-mail: yaroslav.neuro@gmail.com,
Цымбалюк Ярослав Витальевич
Cведения об авторах:
Цымбалюк Ярослав Витальевич, аспирант кафедры нейрохирургии, Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца, врач-нейрохирург отделения восстановительной нейрохирургии, Институт нейрохирургии им. А.П. Ромоданова НАМН Украины, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-8746-0944
Цымбалюк Виталий Иванович, академик НАМН Украины, член-корр. НАН Украины, д.м.н., профессор, Президент НАМН Украины, заведующий кафедрой нейрохирургии, Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца, научный руководитель клиники восстановительной нейрохирургии, Институт нейрохирургии им. А.П. Ромоданова НАМН Украины, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-3608-9679
Третяк Игорь Богданович, д.м.н., заведующий отделением восстановительной нейрохирургии, Институт нейрохирургии им. А.П. Ромоданова НАМН Украины, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0003-0977-7062
Медведев Владимир Викторович, д.м.н., доцент кафедры нейрохирургии, Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0001-7236-3191
Гурьянов Виталий Григорьевич, канд. физ.-мат. наук, доцент кафедры менеджмента здравоохранения, Национальный медицинский университет им. А.А. Богомольца, г. Киев, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-8509-6301
Гацкий Александр Александрович, к.м.н., врач-нейрохирург отделения восстановительной нейрохирургии, Институт нейрохирургии им. А.П. Ромоданова НАМН Украины, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-2212-2143
Петрив Тарас Игоревич, к.м.н., врач-нейрохирург отделения восстановительной нейрохирургии, Институт нейрохирургии им. А.П. Ромоданова НАМН Украины, г. Киев, Украина.
http://orcid.org/0000-0001-9160-8908

ОБЗОРЫ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.309   |  

Т.А. ДЖАРКЕHОВ 1, О.Г. СКИПЕHКО 2, М.Н. ЖУМАБАЕВ 1, С.Т. ЗАИРОВА 3, Н.А. АКАТАЕВ 1, Д.Б. ЕСЕHБАЕВ 1, М.М. МУКУШЕВ 1, К.Ж. НУРМАHОВ 1, М.Е. БАЛШАМБАЕВ 1

ВЗАИМОСВЯЗЬ ПОЛИМОРФИЗМА ГЕHА ФАКТОРА HЕКРОЗА ОПУХОЛИ-АЛЬФА С ОСТРЫМ ПАHКРЕАТИТОМ: СИСТЕМАТИЧЕСКИЙ ОБЗОР

Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова 1, г. Актобе,
Республика Казахстан,
Ассоциация гепатопанкреатобилиарных хирургов стран СНГ 2, г. Москва,
Российская Федерация,
Военный институт Сил воздушной обороны имени дважды Героя Советского Союза Т.Я. Бегельдинова 3, г. Актобе,
Республика Казахстан

Цель. Проведение систематического поиска и обобщение научной информации по оценке взаимосвязи полиморфизма гена TNF- α с развитием и тяжестью клинического течения острого панкреатита.
Материал и методы. Соответствующие научные исследования были определены из электронных баз данных: PubMed и Web of Science. Систематический обзор включал десять исследований «случай-контроль», в которых представлены молекулярно-генетические исследования промотора TNF-α 1660 пациентов с острым панкреатитом и 1618 здоровых добровольцев.
Результаты. Систематический обзор продемонстрировал неоднозначные результаты. В трех исследованиях установлена ассоциация функционально значимого полиморфизма -308G>A в промоторе гена TNF с тяжелой формой острого панкреатита, возникновением SIRS, а также развитием на их фоне MODS. В одном исследовании обнаружена ассоциация полиморфизма -308 G/A гена TNF с риском развития нетяжелой формы острого небилиарного панкреатита. В остальных исследованиях связь полиморфизма гена TNF с тяжестью острого панкреатита не подтвердилась.
Заключение. Представленные генетические исследования промотора TNF- α при остром панкреатите дали неоднозначные результаты. Необходимы дальнейшие более широкие исследования с большими размерами выборки, в популяциях разной этнической принадлежности и с учетом различных этиологических факторов для получения более убедительных доказательств.

Ключевые слова: острый панкреатит, клиническое течение, молекулярно-генетические исследования, фактор некроза опухоли-альфа, генетический полиморфизм
с. 309-317 оригинального издания
Список литературы
  1. Shen HN, Lu CL, Li CY. Epidemiology of first-attack acute pancreatitis in Taiwan from 2000 through 2009: a nationwide population-based study. Pancreas. 2012 Jul;41(5):696-702. doi: 10.1097/MPA.0b013e31823db941
  2. Karakayali FY. Surgical and interventional management of complications caused by acute pancreatitis. World J Gastroenterol. 2014 Oct 7;20(37):13412-23. Published online 2014 Oct 7. doi: 10.3748/wjg.v20.i37.13412
  3. Makhija R, Kingsnorth AN. Cytokine storm in acute pancreatitis. J Hepatobiliary Pancreat Surg. 2002;9(4):401-10. doi: 10.1007/s005340200049
  4. Malleo G, Mazzon E, Siriwardena AK, Cuzzocrea S. Role of tumor necrosis factor-alpha in acute pancreatitis: from biological basis to clinical evidence. Shock. 2007 Aug;28(2):130-40. doi: 10.1097/shk.0b013e3180487ba1
  5. Zhang JM, An J. Cytokines, inflammation, and pain. Int Anesthesiol Clin. 2007 Spring;45(2):27-37. doi: 10.1097/AIA.0b013e318034194e
  6. Chen Y, Xie CL, Hu R, Shen CY, Zeng M, Wu CQ, Chen TW, Chen C, Tang MY., Xue HD, Jin ZY, Zhang XM. Genetic Polymorphisms: A Novel Perspective on Acute Pancreatitis. Gastroenterol Res Pract. 2017;2017:5135172. doi: 10.1155/2017/5135172
  7. Whitcomb DC. Value of genetic testing in the management of pancreatitis. Gut. 2004 Nov;53(11):1710-117. doi: 10.1136/gut.2003.015511
  8. Falagas ME, Pitsouni EI, Malietzis GA, Pappas G. Comparison of PubMed, Scopus, Web of Science, and Google Scholar: strengths and weaknesses. FASEB J. 2008 Feb;22(2):338-42. doi: 10.1096/fj.07-9492LSF
  9. Moher D, Liberati A, Tetzlaff J, Altman DG; PRISMA Group. Preferred reporting items for systematic reviews and meta-analyses: the PRISMA statement. BMJ. 2009 Jul 21;339:b2535. doi: 10.1136/bmj.b2535
  10. Balog A, Gyulai Z, Boros LG, Farkas G, Takács T, Lonovics J, Mándi Y. Polymorphism of the TNF-alpha, HSP70-2, and CD14 genes increases susceptibility to severe acute pancreatitis. Pancreas. 2005 Mar;30(2):e46-50. doi: 10.1097/01.mpa.0000153329.92686.ac
  11. Bishehsari F, Sharma A, Stello K, Toth C, O’Connell MR, Evans AC, LaRusch J, Muddana V, Papachristou GI, Whitcomb DC. TNF-alpha gene (TNFA) variants increase risk for multi-organ dysfunction syndrome (MODS) in acute pancreatitis. Pancreatology. 2012 Mar-Apr;12(2):113-18. doi: 10.1016/j.pan.2012.02.014
  12. Liu Y, Dan G, Wu L, Chen G, Wu A, Zeng P, Xu W. Functional effect of polymorphisms in the promoter of TNFAIP3 (A20) in acute pancreatitis in the Han Chinese population. PLoS One. 2014 Jul 22;9(7):e103104. doi: 10.1371/journal.pone.0103104. eCollection 2014.
  13. Самгина ТА, Бушуева ОЮ, Иванов ВП, Солодилова МА, Назаренко ПМ, Полоников АВ. Связь промоторного полиморфизма -308G>A гена фактора некроза опухоли с тяжестью течения острого панкреатита у русской популяции жителей Курской области. Эксперим и Клин Гастроэнтерология. 2014;(9):17-20. https://elibrary.ru/item.asp?id=22677286
  14. Sargen K, Demaine AG, Kingsnorth AN. Cytokine gene polymorphisms in acute pancreatitis. JOP. 2000 Jul;1(2):24-35. doi: 10.6092/1590-8577/423
  15. Powell JJ, Fearon KC, Siriwardena AK, Ross JA. Evidence against a role for polymorphisms at tumor necrosis factor, interleukin-1 and interleukin-1 receptor antagonist gene loci in the regulation of disease severity in acute pancreatitis. Surgery. 2001 May;129(5):633-40. doi: 10.1067/msy.2001.113375
  16. Zhang DL, Li JS, Jiang ZW, Yu BJ, Tang XM, Zheng HM. Association of two polymorphisms of tumor necrosis factor gene with acute biliary pancreatitis. World J Gastroenterol. 2003 Apr;9(4):824-28. doi: 10.3748/wjg.v9.i4.824
  17. Tukiainen E, Kylänpää ML, Puolakkainen P, Kemppainen E, Halonen K, Orpana A, Methuen T, Salaspuro M, Haapiainen R, Repo H. Polymorphisms of the TNF, CD14, and HSPA1B genes in patients with acute alcohol-induced pancreatitis. Pancreas. 2008 Jul;37(1):56-61. doi: 10.1097/MPA.0b013e31815d9bad
  18. Özhan G, Yanar HT, Ertekin C, Alpertunga B. Polymorphisms in tumour necrosis factor alpha (TNFalpha) gene in patients with acute pancreatitis. Mediators Inflamm. 2010;2010:482950. doi: 10.1155/2010/482950
  19. Park JW, Choi JS, Han KJ, Lee SH, Kim EJ, Cho JH. Association of a genetic polymorphism of IL1RN with risk of acute pancreatitis in a Korean ethnic group. Korean J Intern Med. 2018 Nov;33(6):1103-10. doi: 10.3904/kjim.2017.133
  20. de Beaux AC, Goldie AS, Ross JA, Carter DC, Fearon KC. Serum concentrations of inflammatory mediators related to organ failure in patients with acute pancreatitis. Br J Surg. 1996 Mar;83(3):349-53. doi: 10.1002/bjs.1800830317
  21. Chen CC, Wang SS, Lee FY, Chang FY, Lee SD. Proinflammatory cytokines in early assessment of the prognosis of acute pancreatitis. Am J Gastroenterol. 1999 Jan;94(1):213-18. doi: 10.1111/j.1572-0241.1999.00709.x
  22. Sun Y, Qi H. Relationship between the 308GA polymorphism of the tumor necrosis factor alpha gene and acute or chronic pancreatitis: a meta-analysis. Asian Biomed. 2012 Feb;6(1):1-7. doi: 10.5372/1905-7415.0601.120
  23. Yin YW, Hu AM, Sun QQ, Liu HG, Wang Q, Zeng YH, Xu RJ, Hou ZZ, Zhang SJ. Association between tumor necrosis factor-alpha gene -308A/G polymorphism and the risk of acute pancreatitis: a meta-analysis. J Surg Res. 2012 Nov;178(1):409-14. doi: 10.1016/j.jss.2012.02.001
  24. Yang Z, Qi X, Wu Q, Li A, Xu P, Fan D. Lack of association between TNF-α gene promoter polymorphisms and pancreatitis: a meta-analysis. Gene. 2012 Jul 25;503(2):229-34. doi: 10.1016/j.gene.2012.04.057
  25. Farkas G Jr, Hofner P, Balog A, Takács T, Szabolcs A, Farkas G, Mándi Y. Relevance of transforming growth factor-beta1, interleukin-8, and tumor necrosis factor-alpha polymorphisms in patients with chronic pancreatitis. Eur Cytokine Netw. 2007 Mar;18(1):31-37. doi: 10.1684/ecn.2007.0084
  26. Malleo G, Mazzon E, Siriwardena AK, Cuzzocrea S. Role of tumor necrosis factor-alpha in acute pancreatitis: from biological basis to clinical evidence. Shock. 2007 Aug;28(2):130-40. doi: 10.1097/shk.0b013e3180487ba1
Адрес для корреспонденции:
030019, Республика Казахстан,
г. Актобе, ул. Маресьева, 68,
Западно-Казахстанский медицинский
университет имени Марата Оспанова,
кафедра хирургических болезней №1,
тел.: +7 7132 544297,
e-mail: timurjarkenov@gmail.com,
Джаркенов Тимур Агатаевич
Cведения об авторах:
Джаркенов Тимур Агатаевич, д.м.н., профессор кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0003-4579-6412
Скипенко Олег Григорьевич , д.м.н., профессор, член Правления ассоциации гепатопанкреатобилиарных хирургов стран СНГ, г. Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4192-9620
Жумабаев Марат Нигматович, к.м.н., доцент, руководитель кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0002-5092-6034
Заирова Сауле Тимуровна, к.м.н., Военный институт Сил воздушной обороны имени дважды Героя Советского Союза Т.Я. Бегельдинова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0003-3734-6884
Акатаев Нагашыбай Акатаевич, к.м.н., профессор кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0001-8964-5152
Есенбаев Даулет Балтабаевич, ассистент кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0001-9777-0594
Мукушев Манас Максатович, к.м.н., доцент кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0003-1811-3276
Нурманов Кайрат Жумагамбетович, ассистент кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0003-1422-7524
Балшамбаев Мади Есенжолович, ассистент кафедры хирургических болезней № 1, Западно-Казахстанский медицинский университет имени Марата Оспанова, г. Актобе, Республика Казахстан.
https://orcid.org/0000-0002-0206-1769
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.318   |  

Ю.В. БЕЛОВ 1, И.А. ГУБАРЕВ 1, 2, А.З. САЛЕХ 2, К.Б. ФРОЛОВ 2, К.Н. РЫБАКОВ 2

МИHИ-ДОСТУП В ХИРУРГИИ БРЮШHОЙ АОРТЫ

Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского 1,
Городская клиническая больница № 1 им. Н.И. Пирогова 2, г. Москва,
Российская Федерация

Мини-инвазивная хирургия – это область хирургии, которая позволяет выполнять хирургические вмешательства с минимальным повреждением тканей и органов. В последнее время все чаще наблюдается рост хирургических операций на аорто-подвздошном сегменте с применением мини-лапаротомных разрезов. Мини-инвазивные технологии реализуются за счет классических приемов реконструктивной хирургии брюшной аорты. По мнению большинства авторов, методика мини-лапаротомного доступа к аорте уже достаточно изучена и внедрена в повседневную практику многих клиник нашей страны. Однако до настоящего времени многие вопросы, касающиеся хирургии брюшной аорты из мини-доступа, остаются не освещенными: недостаточно описаны послеоперационные осложнения, особенности хирургической техники, причины неудач и конверсий к полной лапаротомии. У большинства хирургов пока еще нет четкого представления о пространственных условиях для воспроизведения мануальной техники в отграниченном раневом объеме. Помимо этого, в настоящее время, несмотря на большое количество научных работ в отечественной и зарубежной литературе, нет достоверных данных о моделировании доступа к «рабочему» отделу брюшной аорты при операциях по поводу синдрома Лериша и аневризм брюшной аорты из мини-доступа.

Ключевые слова: синдром Лериша, аневризма брюшной аорты, мини-доступ, мини-лапаротомия, хирургия аорты
с. 318-328 оригинального издания
Список литературы
  1. Wooten C, Hayat M, du Plessis M, Cesmebasi A, Koesterer M, Daly KP, Matusz P, Tubbs RS, Loukas M. Anatomical significance in aortoiliac occlusive disease. Clin Anat. 2014 Nov;27(8):1264-74. doi: 10.1002/ca.22444
  2. Diehm C, Schuster A, Allenberg JR, Darius H, Haberl R, Lange S, Pittrow D, von Stritzky B, Tepohl G, Trampisch HJ. High prevalence of peripheral arterial disease and co-morbidity in 6880 primary care patients: cross-sectional study. Atherosclerosis. 2004 Jan;172(1):95-105. doi: 10.1016/s0021-9150(03)00204-1
  3. Conte MS, Bradbury AW, Kolh P, White JV, Dick F, Fitridge R, Mills JL, Ricco JB, Suresh KR, Murad MH, Aboyans V, Aksoy M, Alexandrescu VA, Armstrong D, Azuma N, Belch J, Bergoeing M, Bjorck M, Chakfé N, Cheng S, Dawson J, Debus ES, Dueck A, Duval S, Eckstein HH, Ferraresi R, Gambhir R, Gargiulo M, Geraghty P, Goode S, Gray B, Guo W, Gupta PC, Hinchliffe R, Jetty P, Komori K, Lavery L, Liang W, Lookstein R, Menard M, Misra S, Miyata T, Moneta G, Prado JAM, Munoz A, Paolini JE, Patel M, Pomposelli F, Powell R, Robless P, Rogers L, Schanzer A, Schneider P, Taylor S, Vega De Ceniga M, Veller M, Vermassen F, Wang J, Wang S. Global vascular guidelines on the management of chronic limb-threatening ischemia. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2019 Jul;58(1 Suppl):S1-S109.e33. doi: 10.1016/j.ejvs.2019.05.006
  4. Хамитов ФФ, Белов ЮВ, Верткина НВ, Кузубо-ва ЕА. Миниинвазивная хирургия при синдроме Лериша. Москва, РФ: Наука; 2005. 103 с.
  5. Покровский АВ (ред), Зотикова АЕ. Клиническая ангиология: рук для врачей: в 2 т. Москва, РФ: Медицина; 2004. 1700 c. https://www.booksmed.com/hirurgiya/733-klinicheskaya-angiologiya-pokrovskij.html
  6. Ashton HA, Buxton MJ, Day NE, Kim LG, Marteau TM, Scott RA, Thompson SG. The Multicentre Aneurysm Screening Study (MASS) into the effect of abdominal aortic aneurysm screening on mortality in men: a randomised controlled trial. Lancet. 2002 Nov 16;360(9345):1531-39. doi: 10.1016/s0140-6736(02)11522-4
  7. Schmidt T, Mühlberger N, Chemelli-Steingruber IE, Strasak A, Kofler B, Chemelli A, Siebert U. Benefit, risks and cost-effectiveness of screening for abdominal aortic aneurysm. Rofo. 2010 Jul;182(7):573-80. doi: 10.1055/s-0029-1245140
  8. Покровский АВ, Гонтаренко ВН. Состояние сосудистой хирургии в России в 2013 году [Электронный ресурс] [cсылка активна на 2019 Сент 10]. Режим доступа: http://www.angiolsurgery.org/society/report/2013/
  9. Joint Committee for Vascular Cenres of International Union of Angiology (IUA); Section and Board of Vascular Surgery of Union Européenne des Médecins Spécialistes (SBVS-UEMS), Benedetti-Valentini F, Diamantopoulos E, Antignani PL, Bastounis E, Carpentier P, Fernandes e Fernandes J, Nicolaides A, Bergqvist D, Cairols M, Liapis CD, Nevelsteen A, Van Bockel JH. Guidelines for the organisation of vascular centres in Europe. Part I. Int Angiol. 2009 Oct;28(5):347-52. https://search.proquest.com/openview/cb50181749288f55d8bae957e50b2652
  10. Покровский АВ, Ивандаев АС. Состояние сосудистой хирургии в России в 2017 году [Электронный ресурс]. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2018;24(3 Прил). 60 с. http://www.angiolsurgery.org/society/situation/2017.pdf
  11. Бокерия ЛА, Покровский АВ, Акчурин РС, Алекян БГ, Апханова ТВ, Аракелян ВС, Ахмеджанов НМ, Бурлева ЕП, Вачев АН, Гавриленко АВ, Галстян ГР, Гамзатов ТХ, Ерошенко АВ, Ерошкин ИА, Калашников ВЮ, Затевахин ИИ, Калинин РЕ, Карпенко АА, Кательницкий ИИ, Кохан ЕП, Кузнецов МР, Кульчицкая ДБ, Матюшкин АВ, Мухамадеев ИС, Остроумова ОД, Сапелкин СВ, Светликов АВ, Ситкин ИИ, Сокуренко ГЮ, Сорока ВВ, Сучков ИА, Терехин СА, Фокин АА, Харазов АФ, Хорев НГ, Чернявский М.А, Чупин А.В. Национальные рекомендации по диагностике и лечению заболеваний артерий нижних конечностей [Электронный ресурс] [cсылка активна на 2019 Янв 01]. Режим доступа: http://www.angiolsurgery.org/library/recommendations/2019/recommendations_LLA_2019.pdf
  12. Белов ЮВ. Руководство по сосудистой хирургии с атласом оперативной техники. Москва, РФ: МИА; 2011. 464 с. https://www.mmbook.ru/catalog/hirurgija/sosudistaja-xirurgija/105170-detail
  13. Raffetto JD, Cheung Y, Fisher JB, Cantelmo NL, Watkins MT, Lamorte WW, Menzoian JO. Incision and abdominal wall hernias in patients with aneurysm or occlusive aortic disease. J Vasc Surg. 2003 Jun;37(6):1150-54. doi: 10.1016/s0741-5214(03)00147-2
  14. Augestad KM, Wilsgaard T, Solberg S. Incisional hernia after surgery for abdominal aortic aneurysm. Tidsskr Nor Laegeforen. 2002 Jan 10;122(1):22-24. https://tidsskriftet.no/2002/01/klinikk-og-forskning/arrbrokk-etter-operasjon-abdominalt-aortaaneurisme [Article in Norwegian]
  15. Liapis CD, Dimitroulis DA, Kakisis JD, Nikolaou AN, Skandalakis P, Daskalopoulos M, Kostakis AG. Incidence of incisional hernias in patients operated on for aneurysm or occlusive disease. Am Surg. 2004 Jun;70(6):550-52.
  16. Schlosser V, Blümel J, Spillner G. Transverse laparotomy as an approach pathway in reconstructive vascular surgery. Chirurg. 1972 Oct;43(10):482-83. [Article in German]
  17. Савельев ВС, Кириенко АИ, ред. Сосудистая хирургия: нац рук. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа, 2014. 464 с.
  18. Rob C. Extraperitoneal approach to the abdominal aorta. Surgery. 1963 Jan;53:87-89.
  19. Hioki M, Iedokoro Y, Kawamura J, Yamashita Y, Yoshino N, Orii K, Masuda S, Yamashita K, Tanaka S. Left retroperitoneal approach using a retractor to repair abdominal aortic aneurysms: a comparison with the transperitoneal approach. Surg Today. 2002;32(7):577-80. doi: 10.1007/s005950200104
  20. Wirth G, Moccia R, Clement Darling R, Roddy SP, Mehta M, Kramer BC, Chang BB, Kreienberg PB, Paty PS, Ozsvath KJ, Shah DM. Aortoiliac reconstruction: the retroperitoneal approach and splenic injury. Ann Vasc Surg. 2003 Nov;17(6):604-7. doi: 10.1007/s10016-003-0079-x
  21. Yamada M, Maruta K, Shiojiri Y, Takeuchi S, Matsuo Y, Takaba T. Atrophy of the abdominal wall muscles after extraperitoneal approach to the aorta. J Vasc Surg. 2003 Aug;38(2):346-53. doi: 10.1016/s0741-5214(03)00119-8
  22. Shumacker HB Jr. Extraperitoneal Approach for Vascular Operations: Retrospective Review. South Med J. 1982 Dec;75(12):1499-507, 1516. doi: 10.1097/00007611-198212000-00013
  23. Nakajima T, Kawazoe K, Komoda K, Sasaki T, Ohsawa S, Kamada T. Midline retroperitoneal versus midline transperitoneal approach for abdominal aortic aneurysm repair. J Vasc Surg. 2000 Aug;32(2):219-23. doi: 10.1067/mva.2000.106946
  24. Хамитов ФФ, Белов ЮВ, Базылев ВВ, Кубузова ЕА, Гулешов ВА. Миниинвазивная хирургия синдрома Лериша. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2004;(2):14-17.
  25. Хамитов ФФ, Дибиров МД, Верткина НВ, Лисицкий ДА. Миниинвазивная хирургия аневризм брюшного отдела аорты. Москва, РФ: Наука; 2007. 115 с.
  26. Федоров ИВ, Сигал ЕИ, Одинцов ВВ. Эндоскопическая хирургия. Москва, РФ: Гоэтар-МЦ; 2001. 413 с.
  27. Danielsson G, Albrechtsson U, Norgren L, Danielsson P, Ribbe E, Thörne J, Zdanowski Z. Percutaneous transluminal angioplasty of crural arteries: diabetes and other factors influencing outcome. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2001 May;21(5):432-36. doi: 10.1053/ejvs.2001.1351
  28. Maloney JD, Hoch JR, Carr SC, Acher CW, Turnipseed WD. Preliminary experience with minilaparotomy aortic surgery. Ann Vasc Surg. 2000 Jan;14(1):6-12. doi: 10.1007/s100169910002
  29. Goode SD, Keltie K, Burn J, Patrick H, Cleveland TJ, Campbell B, Gaines P, Sims AJ. Effect of procedure volume on outcomes after iliac artery angioplasty and stenting. Br J Surg. 2013 Aug;100(9):1189-96. doi: 10.1002/bjs.9199
  30. Vorwerk D, Günther RW, Schürmann K, Wendt G. Aortic and iliac stenoses: follow-up results of stent placement after insufficient balloon angioplasty in 118 cases. Radiology. 1996 Jan;198(1):45-48. doi: 10.1148/radiology.198.1.8539403
  31. Martin EC, Katzen BT, Benenati JF, Diethrich EB, Dorros G, Graor RA, Horton KM, Iannone LA, Isner JM, Ramee SR, Schwarten DE, Tegtmeyer CJ, Walker CM, Wholey MH. Multicenter trial of the wallstent in the iliac and femoral arteries. J Vasc Interv Radiol. 1995 Nov-Dec;6(6):843-49. doi: 10.1016/s1051-0443(95)71198-8
  32. Murphy TP, Webb MS, Lambiase RE, Haas RA, Dorfman GS, Carney WI Jr, Morin CJ. Percutaneous revascularization of complex iliac artery stenoses and occlusions with use of Wallstents: three-year experience. J Vasc Interv Radiol. 1996 Jan-Feb;7(1):21-27. doi: 10.1016/s1051-0443(96)70727-3
  33. Барбера Л, Кемен М, Мамми А. Пятилетний опыт хирургии окклюзии аортоподвздошного сегмента с использованием только лапароскопической техники. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2002;8(1):57-66. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2002/1/9.htm
  34. Fearn SJ, Thaveau F, Kolvenbach R, Dion YM. Minilaparotomy for aortoiliac aneurysmal disease: experience and review of the literature. Surg Laparosc Endosc Percutan Tech. 2005 Aug;15(4):220-25. doi: 10.1097/01.sle.0000174570.66301.c4
  35. Matsumoto M, Hata T, Tsushima Y, Hamanaka S, Yoshitaka H, Shinoura S, Sakakibara N. Minimally invasive vascular surgery for repair of infrarenal abdominal aortic aneurysm with iliac involvement. J Vasc Surg. 2002 Apr;35(4):654-60. doi: 10.1067/mva.2002.121745
  36. Turnipseed WD. A less-invasive minilaparotomy technique for repair of aortic aneurysm and occlusive disease. J Vasc Surg. 2001 Feb;33(2):431-34. doi: 10.1067/mva.2001.104588
  37. Weber G, Strauss AL, Jako G. Video controlled, minimally invasive exposure of the abdominal aorta by retroperitoneal approach for aorto-iliac reconstructions. Chirurg. 1995 Feb;66(2):146-50. https://www.researchgate.net/publication/15486044_Video_controlled_minimally_invasive_exposure_of_the_abdominal_aorta_by_retroperitoneal_approach_for_aorto-iliac_reconstructions [Article in German]
  38. Cerveira JJ, Halpern VJ, Faust G, Cohen JR. Minimal incision abdominal aortic aneurysm repair. J Vasc Surg. 1999 Dec;30(6):977-84. doi: 10.1016/s0741-5214(99)70035-2
  39. Прудков МИ. Основы минимально инвазивной хирургии, Екатеринбург, РФ; 2007. 64 с.
  40. Фадин БВ, Прудков МИ, Кузнецов АА. Первый опыт аорто-бедренного шунтирования с применением минилапаротомного доступа при критической ишемии нижних конечностей у больных мультифокальным атеросклерозом. Эндоскоп Хирургия. 2002;(5):4-7.
  41. Де Донато Г, Вебер Г, Де Донато Дж. Аортобифеморальное шунтирование по методике MIDAS. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2002;8(1):48-56. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2002/1/8.htm
  42. Максимов AB, Плотников МВ, Фейсханов АК, Нуретдинов РМ, Галиуллин ОФ. Опыт 500 реконструкций аортобедренного сегмента с использованием минидоступа. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2012;(5):48-51. https://www.mediasphera.ru/issues/khirurgiya-zhurnal-im-n-i-pirogova/2012/5/030023-1207201258
  43. Хамитов ФФ, Лисицкий ДА, Маточкин ЕА, Гаджимурадов РУ, Халидов ОХ. 15-летний опыт хирургического лечения больных с мультифокальным поражением артериального русла. Москов Медицина. 2016;(S1):202. http://mosmed.niioz.ru/jour/article/view/10873
  44. Turnipseed WD, Carr SC, Tefera G, Acher CW, Hoch JR. Minimal incision aortic surgery. J Vasc Surg. 2001;34(1):47-53. doi: 10.1067/mva.2001.115809
  45. Фадин БВ. Операции в аорто-подвздошной зоне из мини–доступа при хронической ишемии нижних конечностей. Хирургия Журн им НИ Пирогова. 2007;(2):14-19.
  46. Максимов АВ, Мамаев ВЕ, Халилов ИГ, Мардеева ГР. Реконструкция аортобедренного сегмента из минилапаротомного доступа. Опыт 100 операций. Ангиология и Сосуд Хирургия. 2006;12(2):106-14. http://www.angiolsurgery.org/magazine/2006/2/15.htm
  47. Путинцев АМ, Султанов РВ, Луценко ВА, Мошнегуц СВ. Снижение частоты конверсий мини-доступа к аорте путем использования предоперационного 3D-проектирования исходя из изменений в аорте и индивидуальных особенностей пациента. Бюл ВСНЦ СО РАМН. 2015;(1):48-54. https://cyberleninka.ru/article/n/snizhenie-chastoty-konversiy-mini-dostupa-k-aorte-putyom-ispolzovaniya-predoperatsionnogo-3d-proektirovaniya-ishodya-iz-izmeneniy-v/viewer
  48. Максимов АВ, Маянская СД, Плотников МВ, Гайсина ЭА. Математическое моделирование оптимального мини-доступа для реконструкции артерий аортобедренного сегмента. Казан Мед Журн. 2012;93(4):611-16. doi: 10.17816/KMJ1554
  49. Kawaharada N, Morishita K, Fukada J, Yamada A, Muraki S, Hachiro Y, Fujisawa Y, Saito T, Kurimoto Y, Abe T. Minilaparotomy abdominal aortic aneurysm repair versus the retroperitoneal approach and standard open surgery. Surg Today. 2004;34(10):837-41. doi: 10.1007/s00595-004-2841-2
Адрес для корреспонденции:
119049, Российская Федерация,
г. Москва, Ленинский проспект, д. 8,
Городская клиническая больница № 1
им. Н.И. Пирогова,
Центр сосудистой, рентгенэндоваскулярной
хирургии и малоинвазивной флебологии,
тел. моб.:+7 985 353 51 90,
e-mail: angiodoc@mail.ru,
Губарев Игорь Александрович
Cведения об авторах:
Белов Юрий Владимирович, д.м.н., профессор, академик РАН, директор Института кардио-аортальной хирургии, Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского, г. Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9280-8845
Губарев Игорь Александрович, соискатель, Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского, врач сердечно-сосудистый хирург ГБУЗ г. Москвы «Городская клиническая больница №1 им. Н.И. Пирогова», Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-3961-5670
Салех Амро Зухайр Салах, врач сердечно-сосудистый хирург ГБУЗ г. Москвы «Городская клиническая больница №1 им. Н.И. Пирогова», Москва, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6479-1743
Фролов Константин Борисович, к.м.н., руководитель Центра сосудистой, рентгенэндоваскулярной хирургии и малоинвазивной флебологии ГБУЗ г. Москвы «Городская клиническая больница №1 им. Н.И. Пирогова», Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-6310-3590
Рыбаков Кирилл Николаевич, врач сердечно-сосудистый хирург ГБУЗ г. Москвы «Городская клиническая больница №1 им. Н.И. Пирогова», Москва, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6530-3382
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.329   |  

В.Я. ХРЫЩАHОВИЧ

ПРИHЦИПЫ ВЕДЕHИЯ ПАЦИЕHТОВ С ВЕHОЗHОЙ ТРОМБОЭМБОЛИЕЙ В ПЕРИОД ПАHДЕМИИ COVID-19

Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск,
Республика Беларусь

Распространение новой коронавирусной инфекции SARS-CoV-2, классифицируемой сейчас как COVID-19, приобрело глобальный характер. Врачи, занимающиеся лечением пациентов с COVID-19, ежедневно сталкиваются с новыми серьезными вызовами. Один из них – высокая распространенность венозных тромбоэмболических осложнений, в особенности в группе пациентов с тяжелым течением инфекционного процесса. Текущие рекомендации допускают эмпирический подход к назначению антикоагуляции при обоснованном подозрении на легочную эмболию/тромбоз глубоких вен, если предполагаемый период ожидания визуализации занимает >4/24 часов соответственно. Применение профилактических доз низкомолекулярного или нефракционированного гепарина или фондапаринукса обязательно у всех стационарных COVID-19-позитивных пациентов на протяжении всего периода госпитализации. При наличии абсолютных противопоказаний к антикоагуляции рекомендуется применение компрессионной терапии или имплантация кава-фильтра. Большинству пациентов с подтвержденной венозной COVID-19-ассоциированной тромбоэмболией (ВТЭ) или с обоснованным подозрением на нее следует назначать терапевтическую (полную) дозу антикоагулянта. Для вторичной длительной тромбопрофилактики в амбулаторных условиях предпочтение следует отдавать прямым оральным антикоагулянтам. Пациентам, которые при поступлении имели ≥3-кратное увеличение уровня D-димера, после выписки следует продолжить начатую в стационаре терапевтическую антикоагуляцию. В настоящем обзоре литературы обобщены последние рекомендации по профилактике, диагностике и лечению COVID-19-ассоциированной ВТЭ. Дальнейшие исследования должны быть сосредоточены на разработке оптимальных стратегий ведения как стационарных, так и амбулаторных пациентов с COVID-19-ассоциированной ВТЭ.

Ключевые слова: венозная тромбоэмболия, COVID-19, тромбопрофилактика, диагностика, лечение
с. 329-338 оригинального издания
Список литературы
  1. Wu Z, McGoogan JM. Characteristics of and important lessons from the coronavirus disease 2019 (COVID-19) outbreak in China: summary of a report of 72,314 cases from the Chinese Center for Disease Control and Prevention. JAMA. 2020 Feb 24. doi: 10.1001/jama.2020.2648. Online ahead of print.
  2. Zhang T, Sun LX, Feng RE. Comparison of clinical and pathological features between severe acute respiratory syndrome and coronavirus disease 2019. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi. 2020 Apr 3;43(0):E040. doi: 10.3760/cma.j.cn112147-20200311-00312. Online ahead of print.
  3. Wu C, Chen X, Cai Y, Xia J, Zhou X, Xu S, Huang H, Zhang L, Zhou X, Du C, Zhang Y, Song J, Wang S, Chao Y, Yang Z, Xu J, Zhou X, Chen D, Xiong W, Xu L, Zhou F, Jiang J, Bai C, Zheng J, Song Y. Risk factors associated with acute respiratory distress syndrome and death in patients with coronavirus disease 2019 pneumonia in Wuhan, China. JAMA Intern Med. 2020 Mar 13:e200994. doi: 10.1001/jamainternmed.2020.0994 [Epub ahead of print]
  4. Kearon C, Akl EA, Ornelas J, Blaivas A, Jimenez D, Bounameaux H, Huisman M, King CS, Morris TA, Sood N, Stevens SM, Vintch JRE, Wells P, Woller SC, Moores L. Antithrombotic therapy for VTE disease: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2016 Feb;149(2):315-52. doi: 10.1016/j.chest.2015.11.026
  5. Klok FA, Kruip MJHA, van der Meer NJM, Arbous MS, Gommers D, Kant KM, Kaptein FHJ, van Paassen J, Stals MAM, Huisman MV, Endeman H. Confirmation of the high cumulative incidence of thrombotic complications in critically III ICU patients with COVID-19: An updated analysis. Thromb Res. 2020 Jul; 191:148-50. doi: 10.1016/j.thromres.2020.04.041
  6. Wichmann D, Sperhake JP, Lütgehetmann M, Steurer S, Edler C, Heinemann A, Heinrich F, Mushumba H, Kniep I, Schröder AS, Burdelski C, de Heer G, Nierhaus A, Frings D, Pfefferle S, Becker H, Bredereke-Wiedling H, Andreas de Weerth, MD, Hans-Richard Paschen, MD, Sara Sheikhzadeh-Eggers, MD, Axel Stang, MD, Stefan Schmiedel, Bokemeyer C, Addo MM, Aepfelbacher M, Püschel K, Kluge S. Autopsy findings and venous thromboembolism in patients with COVID-19: A prospective cohort study. Ann Intern Med. 2020 May 6:M20-2003. Published online 2020 May 6. doi: 10.7326/M20-2003
  7. Tal S, Spectre G, Kornowski R, Perl L. Venous Thromboembolism Complicated with COVID-19: What Do We Know So Far? Acta Haematol. 2020 May 12:1-8. doi: 10.1159/000508233. Online ahead of print.
  8. Obi AT, Barnes GD, Wakefield TW, Brown S, Eliason JL, Arndt E, Henke PK. Practical diagnosis and treatment of suspected venous thromboembolism during COVID-19 pandemic. J Vasc Surg Venous Lymphat Disord. 2020 Apr 17:S2213-333X(20)30221-3. doi: 10.1016/j.jvsv.2020.04.009. Online ahead of print.
  9. Thachil J, Tang N, Gando S, Falanga A, Cattaneo M, Levi M, Clark C, Iba T. ISTH interim guidance on recognition and management of coagulopathy in COVID-19. J Thromb Haemost. 2020 May;18(5):1023-26. doi: 10.1111/jth.14810
  10. Casini A, Alberio L, Angelillo-Scherrer A, Fontana P, Gerber B, Graf L, Hegemann I, Korte W, Hovinga JK, Lecompte T, Martinez M, Nagler M, Studt JD, Tsakiris D, Walter W, Asmis L. Thromboprophylaxis and Laboratory Monitoring for In-Hospital Patients With COVID-19 – A Swiss Consensus Statement by the Working Party Hemostasis. Swiss Med Wkly. 2020 Apr 11;150: w20247. doi: 10.4414/smw.2020.20247. eCollection 2020 Apr 6.
  11. Marietta M, Ageno W, Artoni A, De Candia E, Gresele P, Marchetti M, Marcucci R, Tripodi A. COVID-19 and haemostasis: a position paper from Italian Society on Thrombosis and Haemostasis (SISET). Blood Transfus. 2020 May;18(3):167-69. doi: 10.2450/2020.0083-20
  12. Considerations in prophylaxis and treatment of VTE in COVID-19 Patients [Internet]. The COVID-19 Sub-Committee of the American Venous Forum. 2020 Apr 17. Available from: https://www.veinforum.org/wp-content/uploads/2020/04/COVID-19-White-Paper-04-17-2020-FINAL-1.pdf
  13. BTS Guidance on Venous Thromboembolic Disease in patients with COVID-19 [Internet]. British Thoracic Sosiety. 2020 May 4. Available from: https://www.brit-thoracic.org.uk/about-us/covid-19-information-for-the-respiratory-community/
  14. Pannucci CJ, Swistun L, MacDonald JK, Henke PK and Brooke BS. Individualized Venous Thromboembolism Risk Stratification Using the 2005 Caprini Score to Identify the Benefits and Harms of Chemoprophylaxis in Surgical Patients: A Meta-analysis. Ann Surg. 2017 Jun; 265(6):1094-103. doi: 10.1097/SLA.0000000000002126
  15. Tang N, Bai H, Chen X, Gong J, Li D, Sun Z. Anticoagulant treatment is associated with decreased mortality in severe coronavirus disease 2019 patients with coagulopathy. J Thromb Haemost. 2020 May;18(5):1094-9. doi: 10.1111/jth.14817
  16. Thachil J. The Versatile Heparin in COVID-19. J Thromb Haemost. 2020 May;18(5):1020-22. doi: 10.1111/jth.14821
  17. Li XY, Du B, Wang YS, Kang HYJ, Wang F, Sun B, Qiu HB, Tong ZH. The keypoints in treatment of the critical coronavirus disease 2019 patient. Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi. 2020 Apr 12;43(4):277-81. doi: 10.3760/cma.j.cn112147-20200224-00159
  18. Driggin E, Madhavan MV, Bikdeli B, Chuich T, Laracy J, Bondi-Zoccai G, Brown TS, Nigoghossian C, Zidar DA, Haythe J, Brodie D, Beckman JA, Kirtane AJ, Stone GW, Krumholz HM, Parikh SA. Cardiovascular Considerations for Patients, Health Care Workers, and Health Systems During the Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) Pandemic. J Am Coll Cardiol. 2020 May 12;75(18):2352-71. doi: 10.1016/j.jacc.2020.03.031
  19. Grillet F, Behr J, Calame P, Aubry S, Delabrousse E. Acute Pulmonary Embolism Associated With COVID-19 Pneumonia Detected by Pulmonary CT Angiography. Radiology. 2020 Apr 23;201544. doi: 10.1148/radiol.2020201544. Online ahead of print.
  20. Ishiguro T, Matsuo K, Fujii S, Takayanagi N. Acute thrombotic vascular events complicating influenza-associated pneumonia. Respir Med Case Rep. 2019 Jun 14;28:100884. doi: 10.1016/j.rmcr.2019.100884. eCollection 2019.
  21. Vitali C, Minniti A, Del Papa N. Occurrence of pulmonary embolism in a patient with mild clinical expression of COVID-19 infection. Thromb Res. 2020 May 5. doi: 10.1016/j.thromres.2020.05.002 [Epub ahead of print]
  22. Zhai Z, Li C, Chen Y, Gerotziafas G, Zhang Z, Wan J, Liu P, Elalamy I, Wang C Prevention and Treatment of Venous Thromboembolism Associated with Coronavirus Disease 2019 Infection: A Consensus Statement before Guidelines. Thromb Haemost. 2020 Jun;120(6):937-48. doi: 10.1055/s-0040-1710019
  23. Wang T, Chen R, Liu C, Liang W, Guan W, Tang R, Tang C, Zhang N, Zhong N, Li S. Attention should be paid to venous thromboembolism prophylaxis in the management of COVID-19. Lancet Haematol. 2020 May;7(5):e362-e363. doi: 10.1016/S2352-3026(20)30109-5
  24. Testa S, Prandoni P, Paoletti O, Morandini R, Tala M, Dellanoce C, Giorgi-Pierfranceschi M, Betti M, Battista Danzi G, Pan A, Palareti G. Direct oral anticoagulant plasma levels’ striking increase in severe COVID-19 respiratory syndrome patients treated with antiviral agents: The Cremona experience. J Thromb Haemost. 2020 Apr 23. doi: 10.1111/jth.14871. Online ahead of print.
  25. Poyiadji N, Cormier P, Patel PY, Hadied MO, Bhargava P, Khanna K, Nadig J, Keimig T, Spizarny D, Reeser N, Klochko C, Peterson EL, Song T. Acute Pulmonary Embolism and COVID-19. Radiology. 2020 May 14;201955. doi: 10.1148/radiol.2020201955. Online ahead of print.
  26. Bahia A, Albert RK. The modified Wells score accurately excludes pulmonary embolus in hospitalized patients receiving heparin prophylaxis. J Hosp Med. 2011 Apr;6(4):190-94. doi: 10.1002/jhm.827
  27. Killewich LA, Nunnelee JD, Auer AI. Value of lower extremity venous duplex examination in the diagnosis of pulmonary embolism. J Vasc Surg. 1993 May;17(5):934-38; discussion 938-9. doi: 10.1016/0741-5214(93)90043-l
  28. Zhou F, Yu T, Du R, Fan G, Liu Y, Liu Z, Xiang J, Wang Y, Song B, Gu X, Guan L, Wei Y, Li H, Wu X, Xu J, Tu S, Zhang Y, Chen H, Cao B. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study. Lancet. 2020 Mar 28;395(10229):1054-62. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3
  29. Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, Fan G, Xu J, Gu X, Cheng Z, Yu T, Xia J, Wei Y, Wu W, Xie X, Yin W, Li H, Liu M, Xiao Y, Gao H, Guo L, Xie J, Wang G, Jiang R, Gao Z, Jin Q, Wang J, Cao B. Clinical Features of Patients Infected With 2019 Novel Coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020 Feb 15;395(10223):497-506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5
  30. Klok FA, Barco S, Turpie AGG, Haas S, Kreutz R, Mantovani LG, Gebel M, Herpers M, Bugge J-P, Kostantinides SV, Ageno W. Predictive Value of Venous Thromboembolism (VTE)-BLEED to Predict Major Bleeding and Other Adverse Events in a Practice-Based Cohort of Patients With VTE: Results of the XALIA Study. Br J Haematol. 2018 Nov;183(3):457-65. doi: 10.1111/bjh.15533
  31. Wells PS, Anderson DR, Bormanis J, Guy F, Mitchell M, Gray L, Clement C, Robinson KS, Lewandowski B. Value of assessment of pretest probability of deep-vein thrombosis in clinical management. Lancet. 1997 Dec 20-27;350(9094):1795-98. doi: 10.1016/S0140-6736(97)08140-3
  32. Silveira PC, Ip IK, Goldhaber SZ, Piazza G, Benson CB, Khorasani R. Performance of Wells Score for Deep Vein Thrombosis in the Inpatient Setting. JAMA Intern Med. 2015 Jul;175(7):1112-17. doi: 10.1001/jamainternmed.2015.1687
  33. Klok FA, Kruip MJHA, van der Meer NJM, Arbous MS, D.A.M.P.J. Gommers DAMPJ, Kant KM, Kaptein FHJ, van Paassen J, Stals MAM, Huisman MV, Endemane H. Incidence of thrombotic complications in critically ill ICU patients with COVID-19. Thromb Res. 2020 Jul 01; 191:145-47. doi: 10.1016/j.thromres.2020.04.013
  34. Danzi GB, Loffi M, Galeazzi G, Gherbesi E. Acute pulmonary embolism and COVID-19 pneumonia: a random association? Eur Heart J. 2020 May 14;41(19):1858. doi: 10.1093/eurheartj/ehaa254
  35. Underhill J, Sherman MA, Howard R, Hage A, Obi A, Napolitano L, Coleman DM. The natural history and outcomes of line-associated upper extremity deep venous thromboses in critically ill patients. J Vasc Surg Venous Lymphat Disord. 2017 Sep;5(5):630-37. doi: 10.1016/j.jvsv.2017.03.018
  36. Poterucha TJ, Libby P, Goldhaber SZ. More than an anticoagulant: do heparins have direct anti-inflammatory effects? Thromb Haemost. 2017 Feb 28;117(3):437-44. doi: 10.1160/TH16-08-0620
  37. Weitz JI, Chan NC. Long-term management of venous thromboembolism: lessons from EINSTEIN CHOICE and other extension trials. Thromb Haemost. 2019 May;119(5):689-94. doi: 10.1055/s-0039-1679906
  38. Wells PS, Prins MH, Levitan B, Beyer-Westendorf J, Brighton TA, Bounameaux H, Cohen AT, Davidson BL, Prandoni P, Raskob GE, Yuan Z, Katz EG, Gebel M, Lensing AWA. Long-term Anticoagulation With Rivaroxaban for Preventing Recurrent VTE: A Benefit-Risk Analysis of EINSTEIN-Extension. Chest. 2016 Nov;150(5):1059-68. doi: 10.1016/j.chest.2016.05.023
Адрес для корреспонденции:
220116, Республика Беларусь,
г. Минск, пр. Дзержинского, 83,
Белорусский государственный
медицинский университет,
тел.: +375 17277-11-55,
e-mail: scienceprorektor@bsmu.by,
Хрыщанович Владимир Янович
Cведения об авторах:
Хрыщанович Владимир Янович, д.м.н., профессор, проректор по научной работе, профессор 2-й кафедры хирургических болезней, Белорусский государственный медицинский университет, г. Минск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0001-5353-205X

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.339   |  

С.А. МАРКОСЬЯH

ДЕРМОИДHАЯ КИСТА ЯИЧКА У РЕБЕHКА 14 ЛЕТ

Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва, Медицинский институт, г. Саранск,
Российская Федерация

В работе представлен клинический случай ребенка, 14 лет, с дермоидной кистой правого яичка. Образование впервые было выявлено при профилактическом осмотре в поликлинике. В последующем пациенту неоднократно проводилось ультразвуковое исследование наружных половых органов, при котором в верхнем полюсе правого яичка выявлялась неоднородная эхоструктура размерами 14 мм, 13,7 мм и 12 мм с четким, ровным контуром.
Результаты иммуноферментного анализа крови не показали увеличение основных маркеров опухолевого процесса. При биохимическом тестировании крови отмечалось незначительное повышение уровня прямого билирубина и сывороточного железа.
Для уточнения диагноза проведена магнитно-резонансная томография органов малого таза с внутривенным контрастированием. После проведения указанного обследования был выставлен диагноз «кистозное образование правого яичка».
После проведения необходимых дополнительных диагностических мероприятий (УЗИ периферических лимфатических узлов, обследование брюшной полости с внутривенным контрастным усилением) выполнена операция, заключавшаяся в ревизии правой половины мошонки и удалении образования правого яичка. Интраоперационно по данным экспресс-биопсии диагностировалась дермоидная киста правого яичка, что подтвердилось при последующем гистологическом исследовании. Послеоперационный период протекал гладко. Пациент выписался в удовлетворительном состоянии.
Таким образом, представленное клиническое наблюдение подчеркивает необходимость оптимизации профилактической работы медицинского персонала первичного звена по своевременной диагностике опухолевых процессов наружных половых органов, особенно у детей пубертатного возраста.

Ключевые слова: дермоидная киста, яичко, ультразвуковое исследование, магнитно-резонансная томография, ребенок
с. 339-343 оригинального издания
Список литературы
  1. Давидов МИ, Малков АД. Дермоидная киста яичка. Урология. 2003;(2):52-55.
  2. Немцова МВ, Андреева ЮЮ. Молекулярно-генетические и клинико-морфологические аспекты герминогенных опухолей яичка. Онкоурология. 2015;11(1):12-19. doi: 10.17650/1726-9776-2015-1-12-19
  3. Singh AP, Tanger R, Mishra D, Ansari M, Gupta AK, Shukla AK. Testicular mixed germ cell tumor in a newborn child: a rare case. J Indian Assoc Pediatr Surg. 2019 Apr-Jun;24(2):144-46. doi: 10.4103/jiaps.JIAPS_87_18
  4. Васильева ИГ, Стрельников АИ, Богданов ГП, Алексеев ПВ, Семенова ЕВ. Случай дермоидной кисты яичка у ребенка с синдромом недифференцированной соединительнотканной дисплазии. Вест ИвГМА. 2011;16(1):71-72. https://cyberleninka.ru/article/n/sluchay-dermoidnoy-kisty-yaichka-u-rebenka-s-sindromom-nedifferentsirovannoy-soedinitelnotkannoy-displazii
  5. Носов АК, Мамижев ЭМ, Рева СА, Новиков РВ, Воробьев АВ, Гафтон ГИ, Петров СБ. Влияние задержки диагностики на догоспитальном этапе на результаты лечения больных с герминогенными опухолями яичка в Санкт-Петербурге. Онкоурология. 2013;9(2):63-68. doi: 10.17650/1726-9776-2013-9-2-63-68
  6. Shen J, Bi Y, Wang X, Lu L, Tang L, Liu Y, Chen H, Zhang B. Epidemiologic study of 230 cases of testicular/paratesticular tumors or masses: 15-year experience of a single center. J Pediatr Surg. 2017 Dec;52(12):2056-60. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2017.08.027
  7. Akiyama S, Ito K, Kim WJ, Tanaka Y, Yamazaki Y. Prepubertal testicular tumors: a single-center experience of 44 years. J Pediatr Surg. 2016 Aug;51(8):1351-54. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2016.02.042
  8. Кулева СА, Фасеева НД, Иванова СВ. Номограмма для определения первично-резистентных форм герминогенных опухолей у детей. Рос Журн Детской Гематологии и Онкологии. 2019;6(3):26-30. doi: 10.21682/2311-1267-2019-6-3-26-30
  9. Gilbert D, Rapley E, Shipley J. Testicular germ cell tumours: predisposition genes and the male germ cell niche. Nat Rev Cancer. 2011 Apr;11(4):278-88. doi: 10.1038/nrc3021
  10. Бурова ЕА, Буланов АА, Трякин АА, Федянин МЮ, Матвеев ВБ, Тюляндин СА. Лечение несеминомных герминогенных опухолей яичка I стадии. Онкоурология. 2011;(1):10-15. https://cyberleninka.ru/article/n/lechenie-neseminomnyh-germinogennyh-opuholey-yaichka-i-stadii
  11. Maizlin II, Dellinger M, Gow KW, Goldin AB, Goldfarb M, Nuchtern JG, Langer M, Vasudevan SA, Doski JJ, Raval MV, Beierle EA. Testicular tumors in prepubescent patients. J Pediatr Surg. 2018 Sep;53(9):1748-52. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2017.09.020
  12. Chung JM, Lee SD. Overview of pediatric testicular tumors in Korea. Korean J Urol. 2014 Dec;55(12):789-96. doi: 10.4111/kju.2014.55.12.789
Адрес для корреспонденции:
430032, Российская Федерация,
г. Саранск, ул. Ульянова, 26 А,
Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва,
Медицинский институт,
кафедра факультетской хирургии
с курсами топографической анатомии
и оперативной хирургии, урологии
и детской хирургии,
тел. моб.: +79176990604,
e-mail: markosyansa@mail.ru,
Маркосьян Сергей Анатольевич
Cведения об авторах:
Маркосьян Сергей Анатольевич, доктор медицинских наук, доцент (ученое звание), профессор кафедры факультетской хирургии с курсами топографической анатомии и оперативной хирургии, урологии и детской хирургии, Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва, Медицинский институт, г. Саранск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-9876-4433
DOI: https://dx.doi.org/10.18484/2305-0047.2020.3.344   |  

В.А. БЕЛОБОРОДОВ, А.П. ФРОЛОВ

ЭМФИЗЕМАТОЗHЫЙ ОСТЕОМИЕЛИТ, ОСЛОЖHЕHHЫЙ HЕКРОТИЗИРУЮЩИМ ФАСЦИИТОМ И МИОЗИТОМ

Иркутский государственный медицинский университет, г. Иркутск,
Российская Федерация

Эмфизематозный остеомиелит является крайне редким и потенциально опасным для жизни бактериальным заболеванием, характеризующимся наличием газа внутри кости и в окружающих мягких тканях. Заболевание нередко осложняется анаэробным некротизирующим фасциитом. В статье представлено клиническое наблюдение успешного лечения эмфизематозного остеомиелита правого бедра, осложненного некротизирующим фасциитом и миозитом, у мужчины 55 лет. Заболевание развилось через 20 лет после закрытого перелома бедра и металоостеосинтеза. Эмфизематозный остеомиелит характеризовался выраженной болью в бедре, тяжелым интоксикационным синдромом и наличием пузырьков газа в медуллярной полости бедренной кости на сканах компьютерной томографии.
Особенностью лечения эмфизематозного остеомиелита явилось 3-х этапное хирургическое вмешательство. Первый этап – вскрытие гнойно-некротического очага с широким продольным рассечением кожи и фасций, иссечением некротизированных мягких тканей. Второй этап – гильотинная ампутация правой нижней конечности на уровне бедра. Третий этап – формирование культи бедра в ранние сроки с проведением проточно-промывного дренирования раны. Данная тактика позволила снизить риск первичной ампутации, сохранить больше мягких тканей для формирования культи бедра, более выгодной для протезирования, и сократить сроки лечения.

Ключевые слова: эмфизематозный остеомиелит, внутрикостный газ, некротизирующий фасциит, некротизирующий миозит
с. 344-349 оригинального издания
Список литературы
  1. Abdelbaki A, Bhatt N, Gupta N, Li S, Abdelbaki S, Kumar Y. Emphysematous osteomyelitis of the forefoot. Proc (Bayl Univ Med Cent). 2018 Jan;31(1):100-101. doi: 10.1080/08998280.2017.1390338
  2. Lee J, Jeong CH, Lee MH, Jeong EG, Kim YJ, Kim SI, Kim YR. Emphysematous Osteomyelitis due to Escherichia coli. Infect Chemother. 2017 Jun;49(2):151-54. doi: 10.3947/ic.2017.49.2.151
  3. Luey C, Tooley D, Briggs S. Emphysematous osteomyelitis: a case report and review of the literature. Int J Infect Dis. 2012 Mar;16(3):e216-e20. doi: 10.1016/j.ijid.2011.11.007
  4. Sun X, Xie T. Management of Necrotizing Fasciitis and Its Surgical Aspects. Int J Low Extrem Wounds. 2015 Dec;14(4):328-34. doi: 10.1177/1534734615606522
  5. Trent JT, Kirsner RS. Necrotizing Fasciitis. Wounds. 2002;14(8):284-92. doi: 10.1097/00129334-200205000-00010
  6. Goh T, Goh LG, Ang CH, Wong CH. Early diagnosis of necrotizing fasciitis. Br J Surg. 2014;101:119-25. doi: 10.1002/bjs.9371
  7. Misiakos EP, Bagias G, Patapis P, Sotiropoulos D, Kanavidis P, Machairas A. Current concepts in the management of necrotizing fasciitis. Front Surg. 2014 Sep 29;1:36. doi: 10.3389/fsurg.2014.00036
  8. Elliott DC, Kufera JA, Myers RA. Necrotizing soft tissue infections. Risk factors for mortality and strategies for management Ann Surg. 1996 Nov;224(5):672-83. doi: 10.1097/00000658-199611000-00011
  9. Kumar J, Bandhu S, Kumar A. Intraosseous and intraarticular pneumatosis in anaerobic osteomyelitis. Pediatr Radiol. 2006 Nov;36(11):1220. doi: 10.1007/s00247-006-0279-y
  10. Ram PC, Martinez S, Korobkin M, Breiman RS, Gallis HR, Harrelson JM. CT detection of intraosseous gas: a new sign of osteomyelitis. AJR Am J Roentgenol. 1981 Oct;137(4):721-23. doi: 10.2214/ajr.137.4.721
  11. Patton HM, Conlan JK, Long RF, Waller JT. Unusual presentation of anaerobic osteomyelitis. Am J Med. 1983 Oct;75(4):724-26. doi: 10.1016/0002-9343(83)90465-5
  12. Aiyappan SK, Ranga U, Veeraiyan S. Spontaneous emphysematous osteomyelitis of spine detected by computed tomography: Report of two cases. J Craniovertebr Junction Spine. 2014 Apr;5(2):90-92. doi: 10.4103/0974-8237.139207
  13. Khanduri S, Singh M, Goyal A, Singh S. Emphysematous osteomyelitis: Report of two cases and review of literature. Indian J Radiol Imaging. 2018 Jan-Mar;28(1):78-80. doi: 10.4103/ijri.IJRI_28_17
  14. Potocki J, Kaushik S, Mira JL. Anaerobic osteomyelitis of femoral head with intraosseous, intra-articular, bursal and muscle pneumatosis. Skeletal Radiol. 2003 Jan;32(1):46-48. doi: 10.1007/s00256-002-0567-z
Адрес для корреспонденции:
664003, Российская Федерация,
г. Иркутск, ул. Красного Восстания, дом 1,
Иркутский государственный
медицинский университет,
кафедра общей хирургии и анестезиологии,
тел. моб.: +7 914 884-50-96,
e-mail: frolovphd@mail.ru
Фролов Александр Петрович
Cведения об авторах:
Белобородов Владимир Анатольевич д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии и анестезиологии, Иркутский государственный медицинский университет, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-3299-1924
Фролов Александр Петрович, к.м.н., доцент кафедры общей хирургии и анестезиологии, Иркутский государственный медицинский университет, г. Иркутск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-3453-548X
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007