Новости
хирургии

 Журнал включен
в систему цитирования Scopus
journal cover
android icon Приложение Android

2019 г. №2 Том 27

НАУЧHЫЕ ПУБЛИКАЦИИ
ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHАЯ ХИРУРГИЯ

В.Н. НИКИТИH 1, В.Л. ПОЛУЭКТОВ 1, Т.П. ХРАМЫХ 1, Л.О. БАРСКАЯ 1, Е.А. ЗАБЛОЦКАЯ 2, В.А. ПУТИHЦЕВ 1, В.П. ЕФАHОВ 1

ПЕРВЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ПРИМЕHЕHИЯ ОРИГИHАЛЬHОГО СПОСОБА ЭКСПЕРИМЕHТАЛЬHОГО МОДЕЛИРОВАHИЯ ЯЗВ ЖЕЛУДКА

Омский государственный медицинский университет 1,
Клиническая медико-санитарная часть № 9 Омской области 2, г. Омск,
Российская Федерация

Цель. Разработать и апробировать в эксперименте способ моделирования язвы желудка у мелких лабораторных животных.
Материал и методы. В эксперимент были включены 38 белых беспородных крыс. Производили мини-лапаротомию, в операционное поле выводили желудок. 70%-ный раствор уксусной кислоты вводили в подслизистый слой со стороны просвета желудка при помощи устройства для интраорганных внутрипросветных инъекций. Выведение животных из эксперимента осуществлялось на 3, 5, 7-й день после операции, определялась площадь язвенного дефекта с микроскопической оценкой тканевого и клеточного состава в зоне язвенного дефекта.
Результаты. У двух животных при введении в подслизистый слой стенки желудка 0,06 мл раствора 70%-ой уксусной кислоты произошел тотальный некроз всех слоев с присоединением флегмоны желудка, они погибли на 2-е сутки от распространенного перитонита на фоне перфорации некротизированной стенки желудка. Медиана площади язвенного дефекта желудка составила при введении 0,04 мл через 3 суток – 1,88 см2, через 7 суток – 0,34 см2; при введении 0,03 мл – 0,94 см2 и 0,19 см2 соответственно; при введении 0,02 мл – 0,63 см2 и 0,16 см2 соответственно; при введении 0,01 мл – 0,31 см2 и 0,02 см2 соответственно. Морфологически подтверждено, что дном язвенного дефекта является мышечный слой желудка. Выявлена пороговая доза вводимого 70%-го раствора кислоты (0,06 мл), превышение которой влечет за собой тотальный некроз стенки желудка, а также обозначены перспективы возможной зависимости между объемом повреждающего фактора, размерами возникающего язвенного дефекта и сроками заживления последнего.
Заключение. Предложенный способ моделирования желудочных язв является воспроизводимым и может быть рекомендован к применению в экспериментальной хирургии.

Ключевые слова: язва желудка, экспериментальное моделирование, уксусная кислота, крысы, внутрипросветная инъекция, мини-лапаротомия
с. 131-137 оригинального издания
Список литературы
  1. Brzozowski T. Experimental production of peptic ulcer, gastric damage and cancer models and their use in pathophysiological studies and pharmacological treatment- Polish achievements. J Physiol Pharmacol. 2003 Dec;54(Suppl 3):99-126. http://www.jpp.krakow.pl/journal/archive/12_03_s3/articles/07_article.html
  2. Agbaje EO, Doe YP. Gastric and duodenal antiulcer effects of aqueous bark extract of Dialium guineense Wild. (Fabaceae) and the possible mechanisms in laboratory models. J Phytopharmacol. 2015;4(5):268-75. http://www.phytopharmajournal.com/Vol4_Issue5_06.pdf
  3. Bahadır FE, Özbeyli D, Mardinoğlu G, Ozbeyli D, Temiz F, M. Sağanak, H. Şahin, M. Yüksel, F.Ercan, B. Yeğen. Regular swimming before the induction of ulcer ameliorates oxidative gastric damage in rats: the anxiolytic effect of exercise. MMJ. 2016;29(3):135-44. doi: 10.5472/MMJoa.2903.01
  4. Manjegowda SB, Rajagopal HM, Dharmesh SM. Polysaccharide of Black cumin (Nigella sativa) modulates molecular signaling cascade of gastric ulcer pathogenesis. Int J Biol Macromol. 2017 Aug;101:823-36. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.03.093
  5. de Oliveira Cabral C, Campos A, da Silva LM, Boeing T, de Andrade SF, Filho VC, Nesello LÂN. Gastroprotective potential of methanolic extract and dimethyl cardamonin from Campomanesia reitziana fruits in mice. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2017 Jun;390(6):661-66. doi: 10.1007/s00210-017-1369-0
  6. Okabe S, Amagase K. An overview of acetic acid ulcer models-the history and state of the art of peptic ulcer research. Biol Pharm Bull. 2005 Aug;28(8):1321-41. doi: 10.1248/bpb.28.1321
  7. Луценко ВД, Мигунов АА, Татьяненко ТН, Сучалкин ЕБ, Гонтарев СН. Применение биополимерных материалов при перфорации полых органов в эксперименте. Новости Хирургии. 2013;21(4):10-15. doi: 10.18484/2305-0047.2013.4.10
  8. Berenguer B, Sánchez LM, Quílez A, López-Barreiro M, de Haro O, Gálvez J, Martín MJ. Protective and antioxidant effects of Rhizophora mangle L. against NSAID-induced gastric ulcers. J Ethnopharmacol. 2006 Jan 16;103(2):194-200. doi: 10.1016/j.jep.2005.08.029
  9. Oh TY, Ahn GJ, Choi SM, Ahn BO, Kim WB. Increased susceptibility of ethanol-treated gastric mucosa to naproxen and its inhibition by DA-9601, an Artemisia asiatica extract. World J Gastroenterol. 2005 Dec 21;11(47):7450-56. doi: 10.3748/wjg.v11.i47.7450
  10. Soni H, Shah A, Paul A, Patel G. Anti-ulcer activity of herbo-mineral formulation (Asecure capsule) against experimentally induced acute and chronic gastric ulcers in rats. Int J Pharmacol Clin Sci. 2014 Sep;3(Is):61-67. https://www.ijpcs.net/sites/default/files/IJPCS_3_3_04.pdf
Адрес для корреспонденции:
644043, Российская Федерация,
г. Омск, ул. Ленина, д. 12,
Омский государственный
медицинский университет,
кафедра факультетской хирургии, урологии,
тел.: +7 3812 35-91-30,
e-mail: nikitin-1966@inbox.ru,
Никитин Вячеслав Николаевич
Cведения об авторах:
Никитин Вячеслав Николаевич, к.м.н., доцент кафедры факультетской хирургии, урологии, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-7250-9266
Полуэктов Владимир Леонидович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой факультетской хирургии, урологии, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9395-5521
Храмых Татьяна Петровна, д.м.н., профессор, заведующая кафедрой топографической анатомии и оперативной хирургии, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-5508-6679
Барская Любовь Олеговна, ассистент кафедры топографической анатомии и оперативной хирургии, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-0460-4296
Заблоцкая Елена Александровна, врач-патологоанатом, Клиническая медико-санитарная часть № 9 Омской области, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-4937-7699
Путинцев Владислав Андреевич, студент 5-го курса лечебного факультета, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-6396-8727
Ефанов Владимир Петрович, студент 5-го курса лечебного факультета, Омский государственный медицинский университет, г. Омск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-6512-9831

ОБЩАЯ И ЧАСТHАЯ ХИРУРГИЯ

И.Д. ДУЖИЙ, А.В. КРАВЕЦ, С.В. ПОПОВ, И.А. ГHАТЕHКО

ОПТИМИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕHИЯ ХИМИОРЕЗИСТЕHТHОГО ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ

Сумский государственный университет, медицинский институт, г. Сумы,
Украина

Цель. Улучшить эффективность лечения пациентов с химиорезистентным туберкулезом легких, распространенность поражения при котором превышает пять сегментов, путем внедрения в практику усовершенствованного комбинированного способа лечения.
Материал и методы. Предложенный метод хирургического лечения применен у 17 пациентов с распространенным химиорезистентным туберкулезом легких. Расширенная резистентнoсть установлена у 6 (35,3%) человек, мультирезистентность – у 11 (64,7%). Первым этапом предложенной методики было наложение за 2 месяца до оперативного вмешательства пневмоперитонеума. При оперативном вмешательстве применяли модификацию торакопластики. Сущность операции состояла в полном удалении I ребра, частичном высечении паравертебральных отрезков II и IV (4-6 см), V и VII (6-8 см) ребер и фрагментировании III и VI ребер путем их перекусывания в вертебральном и аксиллярном отделах, после чего вертебральные отделы II и IV, V и VII ребер «сводились» над фрагментированными отделами III и VI ребер, что значительно уменьшало объем плевральной полости и увеличивало коллапс пораженного легкого.
Результаты. Послеоперационный койко-день составил 75,8±38,3 (M±σ). Закрытие полостей распада в легком оперированого гемиторакса произошло у 15 (88,2%) пациентов к выписке из стационара. Бактериовыделение прекратилось у 15 (88,2%) оперированных, в стационаре. У 2 (11,8%) оперированных бактериовыделение уменьшилось, но полость распада продолжала определяться. Закрытие полости распада у одного из них было зафиксировано через 3 месяца после операции на амбулаторном этапе лечения.
Заключение. Предложенный способ лечения позволяет достичь закрытия деструктивных полостей, рассасывания инфильтративных изменений оперированного легкого и абациллирования пациентов. Метод рекомендуется использовать для лечения различных форм химиорезистентного туберкулеза, поражающего больше 5 сегментов легкого, при наличии противопоказаний к резекционным методам лечения.

Ключевые слова: химиорезистентный туберкулез легких, бактериовыделение, оперативное лечение, торакопластика, пневмоперитонеум
с. 138-145 оригинального издания
Список литературы
  1. Global tuberculosis report 2016. Geneva: WHO; 2016. 201 p. http://apps.who.int/medicinedocs/documents/s23098en/s23098en.pdf
  2. Cegielski JP, Kurbatova E, van der Walt M, Brand J, Ershova J, Tupasi T, Caoili JC, Dalton T, Contreras C, Yagui M, Bayona J, Kvasnovsky C, Leimane V, Kuksa L, Chen MP, Via LE, Hwang SH, Wolfgang M, Volchenkov GV, Somova T, Smith SE, Akksilp S, Wattanaamornkiet W, Kim HJ, Kim CK, Kazennyy BY, Khorosheva T, Kliiman K, Viiklepp P, Jou R, Huang AS, Vasilyeva IA, Demikhova OV; Global PETTS Investigators, Lancaster J, Odendaal R, Diem L, Perez TC, Gler T, Tan K, Bonilla C, Jave O, Asencios L, Yale G, Suarez C, Walker AT, Norvaisha I, Skenders G, Sture I, Riekstina V, Cirule A, Sigman E, Cho SN, Cai Y, Eum S, Lee J, Park S, Jeon D, Shamputa IC, Metchock B, Kuznetsova T, Akksilp R, Sitti W, Inyapong J, Kiryanova EV, Degtyareva I, Nemtsova ES, Levina K, Danilovits M, Kummik T, Lei YC, Huang WL, Erokhin VV, Chernousova LN, Andreevskaya SN, Larionova EE, Smirnova TG. Multidrug-resistant tuberculosis treatment outcomes in relation to treatment and initial versus acquired second-line drug resistance. Clin Infect Dis. 2016 Feb 15;62(4):418-30. Epub 2015 Oct 27. doi: 10.1093/cid/civ910
  3. Ojiezeh T, Ogundipe OO, Adefosoye VA. A retrospective study on incidence of pulmonary tuberculosis and human immunodeficiency virus co-infection among patients attending National Tuberculosis and Leprosy Control Programme, Owo centre. The Pan African Medical Journal. 2015;20:345. doi: 10.11604/pamj.2015.20.345.5643
  4. Тодорико ЛД, Вольф СБ, Кужко ММ, Гельберг ИС, Алексо ЕН, Семьянив ИА. Современные аспекты проблемы туберкулеза в отдельно взятых регионах Украины и Республики Беларусь. Журн ГрГМУ. 2016;(2):75-78. http://journal-grsmu.by/index.php/ojs/article/view/1940
  5. Батыршина ЯР, Краснов ВА, Петренко ТВ. Результаты лечения туберкулеза с множественной и широкой лекарственной устойчивостью возбудителя и эффективность резекционной хирургии у пациентов с факторами риска неблагоприятных исходов. Туберкулез и Болезни Лёгких. 2016;94(5):28-34. doi: 10.21292/2075-1230-2016-94-5-28-34
  6. Prasad R, Singh A, Balasubramanian V, Gupta N. Extensively drug-resistant tuberculosis in India: Current evidence on diagnosis & management. Indian J Med Res. 2017 Mar;145(3):271-93. doi: 10.4103/ijmr.IJMR_177_16
  7. Naidoo P, Theron G, Rangaka MX, Chihota VN, Vaughan L, Brey ZO, Pillay Y. The South African Tuberculosis Care Cascade: Estimated Losses and Methodological Challenges. J Infect Dis. 2017 Nov 6;216(Suppl_7):S702-S713. doi: 10.1093/infdis/jix335
  8. Лаптев АН, Каратыш МИ. Отдаленные результаты раннего применения экстраплевральной торакопластики в комплексном лечении больных инфильтративным туберкулезом легких с множественной лекарственной устойчивостью. Мед Панорама. 2010;(9):14-16. https://www.bsmu.by/files/8b24f33d7e933cc948fd87d0b2c53425
  9. Laniado-Laborín R. Multidrug-resistant tuberculosis: standardized or individualized treatment? The question has already been answered. Expert Rev Respir Med. 2010 Apr;4(2):143-46. doi: 10.1586/ers.10.6
  10. The role of surgery in the treatment of pulmonary TB and multidrug- and extensively drug-resistant TB. WHO Regional Office for Europe; 2014. 17 р. http://www.euro.who.int/__data/assets/pdf_file/0005/259691
  11. Yerimbetov KD, Zetov AS, Abildayev T, Bekembayeva GS, Ismailov SS. The effectiveness of surgical methods of treatment of pulmonary tuberculosis for patients with multidrug resistant at adequate chemotherapy (retrospective, case control, comparative research). Surg Sci. 2014;5(4):164-69. doi: 10.4236/ss.2014.54029
  12. Гиллер ДБ, Шайхаев АЯ, Токаев КВ, Ениленис ИИ, Мартель ИИ, Глотов АА, Папков АВ, Садовникова СС, Асанов БМ, Гиллер ГВ, Волынкин АВ, Барило ВН. Непосредственные результаты хирургического лечения больных деструктивным туберкулезом легких, выделяющих МБТ с обширной лекарственной устойчивостью. Туберкулез и Болезни Легких. 2010;(3):18-22.
  13. Dheeraj S, Anula S, Sanjeev D, Rajendra MM. Thoracoplasty: a 15 year single centre experience. IOSR-JDMS. 2017;16(03):124-27 doi: 10.9790/0853-160306124127
  14. Krasnov D, Krasnov V, Skvortsov D, Felker I. Thoracoplasty for Tuberculosis in the Twenty-first Century. Thorac Surg Clin. 2017 May;27(2):99-11. doi: 0.1016/j.thorsurg.2017.01.003
  15. Омельчук ДЕ, Тычкова ИБ. Эффективность коллапсохирургических и комбинированных вмешательств при распространенном фиброзно-кавернозном туберкулезе легких. Туберкулез и Болезни Лёгких. 2011;88(5):86. https://elibrary.ru/item.asp?id=16453283
Адрес для корреспонденции:
40030, Украина,
г. Сумы, ул. Троицкая, д. 48,
Сумский государственный университет,
кафедра общей хирургии,
радиационной медицины и фтизиатрии,
тел. 8 (0542) 65-65-55,
e-mail: gensurgery@med.sumdu.edu.ua,
Дужий Игорь Дмитриевич
Cведения об авторах:
Дужий Игорь Дмитриевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой общей хирургии, радиационной медицины и фтизиатрии, медицинский институт, Сумский государственный университет, г. Сумы, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-4995-0096
Кравец Александр Валериевич, к.м.н., доцент кафедры общей хирургии, радиационной медицины и фтизиатрии, медицинский институт, Сумский государственный университет, г. Сумы, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-3394-6671
Попов Сергей Витальевич, д.м.н., профессор, профессор кафедры педиатрии, медицинский институт, Сумский государственный университет, г. Сумы, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-1789-1474
Гнатенко Иван Андреевич, аспирант кафедры общей хирургии, радиационной медицины и фтизиатрии, медицинский институт, Сумский государственный университет, г. Сумы, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-7739-738X

В.И. БЕЛОКОHЕВ 1, А.Г. ЖАРОВ 1,2

ОСОБЕHHОСТИ ХИРУРГИЧЕСКОГО ЛЕЧЕHИЯ ПАЦИЕHТОВ С HЕОСЛОЖHЕHHОЙ БЕДРЕHHОЙ ГРЫЖЕЙ

Самарский государственный медицинский университет 1,
Самарская городская больница № 10 2, г. Самара,
Российская Федерация

Цель. Улучшить результаты лечения пациентов с неосложненной бедренной грыжей путем выявления особенностей клинического течения заболевания и обоснованного применения способов операций с учетом возможного разрушения связки Купера.
Материал и методы. Проведен анализ лечения 46 пациентов с неосложненной бедренной грыжей. Мужчин было 12 (26%), женщин – 34 (74%). В контрольную группу вошли 24 пациента с пластикой грыжевых ворот местными тканями. В основную группу – 22 пациента, у которых использовали протезирующую пластику, в том числе с использованием предложенного способа операции. Оценку результатов пластик бедренного канала в группах проводили по частоте развития осложнений.
Результаты. В контрольной группе ранние осложнения возникли у 11 пациентов: гематома – у 3; воспалительная инфильтрация раны – у 4; нагноение раны – у 4. Поздние осложнения выявлены у 12 пациентов: боль в зоне операции – у 4; парастезии – у 5; ощущение дискомфорта в паховой области – у 3, рецидивы заболевания – у 4. В основной группе ранние осложнения возникли у 4 пациентов: гематома – у 1, воспалительная инфильтрация раны – у 1, нагноение раны – у 1, серома – у 1. Поздние осложнения выявлены у 3 пациентов: боль в зоне операции – у 1, онемение – у 1, ощущение дискомфорта в паховой области – у 1, рецидивы заболевания – у 2. Применение протезирующих способов пластики бедренного канала позволило снизить частоту ранних осложнений в 2,5 раза, поздних – в 3,7 раза, число рецидивов заболевания – в 2 раза.
Заключение. Пластика бедренного канала местными тканями и с использованием протеза ограничена при разрушении связки Купера. Предлагаемый способ операции протезом с выступом по нижнему медиальному краю позволяет выполнить операцию при разрушении тканей в зоне бедренного канала.

Ключевые слова: бедренная грыжа, протезы и имплантаты, диагностика, способы операций, результаты лечения
с. 146-152 оригинального издания
Список литературы
  1. Nyhus LM. Individualization of hernia repair: a new era. Surgery. 1993 Jul;114(1):1-2.
  2. Жебровский ВВ, Ильченко ФН. Атлас операций при грыжах живота. Симферополь, Украина; 2004. 315 с. http://kingmed.info/knigi/Hiryrgia/Abdominalnaa_hiryrgia/book_2314/Atlas_operatsiy_pri_grijah_jivota-Jebrovskiy_VV_Ilchenko_FN-2004-pdf
  3. Подлужный ВИ, Краснов ОА, Котов МС, Старчёнков СБ. Паховая и бедренная грыжи: моногр. Кемерово, РФ; 2015. 143 с.
  4. Whalen HR, Kidd GA, O’Dwyer PJ. Femoral hernias. BMJ. 2011 Dec 8;343:d7668. doi: 10.1136/bmj.d7668
  5. Babar M, Myers E, Matingal J, Hurley MJ. The modified Nyhus-Condon femoral hernia repair. Hernia. 2010 Jun;14(3):271-75. doi: 10.1007/s10029-009-0606-y
  6. Chen J, Lv Y, Shen Y, Liu S, Wang M. A prospective comparison of preperitoneal tension-free open herniorrhaphy with mesh plug herniorrhaphy for the treatment of femoral hernias. Surgery. 2010 Nov;148(5):976-81. doi: 10.1016/j.surg.2010.02.006
  7. Roth N, Gangl O, Havlicek W, Függer R. The impact of emergency surgery on results of femoral hernia repair. Eur Surg. 2010 Dec;42(6):299-303. doi: 10.1007/s10353-010-0573-7
  8. Humes DJ, Radcliffe RS, Camm C, West J. Population-based study of presentation and adverse outcomes after femoral hernia surgery. Br J Surg. 2013 Dec;100(13):1827-32. doi: 10.1002/bjs.9336
  9. Nilsson H, Stylianidis G, Haapamäki M, Nilsson E, Nordin P. Mortality after groin hernia surgery. Ann Surg. 2007 Apr;245(4):656-60. doi: 10.1097/01.sla.0000251364.32698.4b
  10. Dahlstrand U, Wollert S, Nordin P, Sandblom G, Gunnarsson U. Emergency femoral hernia repair: a study based on a national register. Ann Surg. 2009 Apr;249(4):672-76. doi: 10.1097/SLA.0b013e31819ed943
  11. Chan G, Chan CK. Longterm results of a prospective study of 225 femoral hernia repairs: indications for tissue and mesh repair. J Am Coll Surg. 2008 Sep;207(3):360-67. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2008.04.018
  12. Насибян АБ. Проблемы лечения больных с рецидивными паховыми грыжами и пути их решения. Аспирант Вестн Поволжья. 2011;(5-6):147-50. http://www.aspvestnik.com/2011_5-6/article/30_nasibyan.pdf
  13. Dahlstrand U, Sandblom G, Wollert S, Gunnarsson U. Limited potential for prevention of emergency surgery for femoral hernia. World J Surg. 2014 Aug;38(8):1931-36. doi: 10.1007/s00268-014-2539-6
Адрес для корреспонденции:
443099, Российская Федерация,
г. Самара, ул. Чапаевская, д. 89,
Самарский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургических болезней №2,
тел. раб.: +7 846 337-02-96,
e- mail: belokonev63@yandex.ru,
Белоконев Владимир Иванович
Cведения об авторах:
Белоконев Владимир Иванович, заслуженный врач РФ, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-4625-6664
Жаров Андрей Вячеславович, заочный аспирант, кафедра хирургических болезней № 2, Самарский государственный медицинский университет, врач-хирург, Самарская городская больница №10, г. Самара, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-4878-0814

М.Ф. ЧЕРКАСОВ, К.М. ГАЛАШОКЯH, Ю.М. СТАРЦЕВ, Д.М. ЧЕРКАСОВ, А.А. ПОМАЗКОВ, С.Г. МЕЛИКОВА

ВЛИЯHИЕ ВАКУУМ-ТЕРАПИИ HА ЗАЖИВЛЕHИЕ РАH КРЕСТЦОВО-КОПЧИКОВОЙ ОБЛАСТИ

Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону,
Российская Федерация

Цель. Оценить раневую репарацию у пациентов с эпителиальным копчиковым ходом с открытым ведением раны и стимуляцией заживления вакуумной терапией.
Материал и методы. Клиническое исследование включает 73 пациента с эпителиальным копчиковым ходом, которым выполнено хирургическое лечение открытым способом. Мужчин было 58 (79,5%), женщин – 15 (20,5%). Пациенты были разделены на основную группу (n=39), которым после иссечения эпителиального копчикового хода проводилась оригинальная методика вакуум-терапии, и контрольную (n=34), которым выполнено иссечение копчиковых ходов с оставлением раны открытой и лечением традиционными мазевыми повязками. В исследовании оценивались клинические характеристики, раневые цитограммы и планиметрические показатели заживления ран после иссечения эпителиального копчикового хода.
Результаты. В основной группе исследования на первой неделе лечения наблюдалось снижение воспалительного процесса, ко второй неделе – формирование грануляционной ткани, приводившее к очищению и эпителизации послеоперационной раны, к третьей неделе – благоприятные условия для контракции ран и образования соединительной ткани. При цитологическом исследовании с 8-го дня после вакуумной терапии уменьшалось воспаление у 32 (82,1%) пациентов, с 12-х суток в 12 (30,8%) наблюдениях определялись регенераторные цитограммы. К 16-му дню в 23 (59%) наблюдениях основной группы в ране отмечались регенераторные процессы, а в контрольной преобладали воспалительно-регенераторные цитограммы – 20 (58,8%) наблюдений. В группах исследования установлено, что в первые 16 суток лечения скорость заживления и уменьшения размеров раны в 2,6 раза выше в основной группе.
Заключение. Стимуляция репарации в послеоперационных ранах при открытом способе лечения эпителиального копчикового хода с применением вакуумной терапии ускоряет их заживление и улучшает результаты лечения по сравнению с традиционным открытым методом лечения.

Ключевые слова: эпителиальный копчиковый ход, хирургическое лечение, заживление ран, вакуум-терапия, VAC-терапия, репарация
с. 153-160 оригинального издания
Список литературы
  1. Титов АЮ, Костарев ИВ, Батищев АК. Этио-патогенез и хирургическое лечение эпителиального копчикового хода (Обзор литературы). Рос Журн Гастроэнтерологии Гепатологии Колопроктологии. 2015;25(2):69-78. [дата обращения: 2018 Сен 8]. http://docplayer.ru/30600226-Etiopatogenez-i-hirurgicheskoe-lechenie-epitelialnogo-kopchikovogo-hoda.html
  2. Loganathan A, Arsalani Zadeh R, Hartley J. Pilonidal disease: time to reevaluate a common pain in the rear! Dis Colon Rectum. 2012 Apr;55(4):491-93. doi: 10.1097/DCR.0b013e31823fe06c
  3. Søndenaa K, Andersen E, Nesvik I, Søreide JA. Patient characteristics and symptoms in chronic pilonidal sinus disease. Int J Colorectal Dis. 1995;10(1):39-42. doi: 10.1007/BF00337585
  4. Iesalnieks I, Ommer A, Petersen S, Doll D, Herold A. German national guideline on the management of pilonidal disease. Langenbecks Arch Surg. 2016 Aug;401(5):599-609. doi: 10.1007/s00423-016-1463-7
  5. Gendy AS, Glick RD, Hong AR, Dolgin SE, Soffer SZ, Landers H, Herrforth M, Rosen NG. A comparison of the cleft lift procedure vs wide excision and packing for the treatment of pilonidal disease in adolescents. J Pediatr Surg. 2011 Jun;46(6):1256-59. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2011.03.062
  6. McCallum I, King PM, Bruce J. Healing by primary versus secondary intention after surgical treatment for pilonidal sinus. Cochrane Database Syst Rev. 2007 Oct 17;(4):CD006213. doi: 10.1002/14651858.CD006213.pub2
  7. Segre D, Pozzo M, Perinotti R, Roche B. The treatment of pilonidal disease: guidelines of the Italian Society of Colorectal Surgery (SICCR). Tech Coloproctol. 2015 Oct;19(10):607-13. doi: 10.1007/s10151-015-1369-3
  8. Cherkasov MF, Galashokyan KM, Startsev YuM, Melikova SG, Cherkasov DM. Comparative study of treatment methods of pilonidal sinus. New Armenian Med J. 2016;10(4):67-71. https://elibrary.ru/item.asp?id=27844577
  9. Biter LU, Beck GM, Mannaerts GH, Stok MM, van der Ham AC, Grotenhuis BA. The use of negative-pressure wound therapy in pilonidal sinus disease: a randomized controlled trial comparing negative-pressure wound therapy versus standard open wound care after surgical excision. Dis Colon Rectum. 2014 Dec;57(12):1406-11. doi: 10.1097/DCR.0000000000000240
  10. Banasiewicz T, Bobkiewicz A, Borejsza-Wysocki M, Biczysko M, Ratajczak A, Malinger S, Drews M. Portable VAC therapy improve the results of the treatment of the pilonidal sinus--randomized prospective study. Pol Przegl Chir. 2013 Jul;85(7):371-76. doi: 10.2478/pjs-2013-0056
Адрес для корреспонденции:
344022, Российская Федерация,
г. Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, д. 29,
Ростовский государственный
медицинский университет,
кафедра хирургических болезней ФПК и ППС,
тел.: +7 (918) 546 58 02,
e-mail: ya.carpusha88@yandex.ru,
Галашокян Карапет Мелконович
Cведения об авторах:
Черкасов Михаил Федорович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой хирургических болезней ФПК и ППС, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-7587-8406
Галашокян Карапет Мелконович, к.м.н., ассистент кафедры хирургических болезней ФПК и ППС, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-5577-2436
Старцев Юрий Михайлович, к.м.н., доцент кафедры хирургических болезней ФПК и ППС, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-5769-4598
Черкасов Денис Михайлович, к.м.н., доцент кафедры хирургических болезней №2, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-0320-7923
Помазков Андрей Александрович, к.м.н., доцент кафедры хирургических болезней ФПК и ППС, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0001-6285-9556
Меликова Сабина Гаджиевна, старший лаборант кафедры хирургических болезней ФПК и ППС, Ростовский государственный медицинский университет, г. Ростов-на-Дону, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-1966-1664

И.Н. КЛИМОВИЧ, С.С. МАСКИH, П.В. АБРАМОВ, А.В. ПАВЛОВ

КЛИHИЧЕСКОЕ ЗHАЧЕHИЕ СИHДРОМА КИШЕЧHОЙ HЕДОСТАТОЧHОСТИ ПРИ ЯЗВЕHHЫХ ГАСТРОДУОДЕHАЛЬHЫХ КРОВОТЕЧЕHИЯХ

Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград,
Российская Федерация

Цель. Установить частоту и предикторы развития синдрома кишечной недостаточности у пациентов с кровотечениями из гастродуоденальных язв, уточнить его роль в патогенезе системных дисфункций.
Материал и методы. В исследовании приняли участие 149 пациентов с кровотечениями из гастродуоденальных язв. Изучалась выраженность эндотоксикоза при синдроме кишечной недостаточности и без такового, прослеживалась связь синдрома с формированием других системных дисфункций (на примере печеночно-почечной недостаточности).
Результаты. В динамике с 1-х по 5-е сутки нахождения в стационаре синдром кишечной недостаточности был обнаружен у 72 (65%) пациентов из 110 (110/149 – 74%) только с тяжелыми степенями кровопотери. В 90% случаев развитию синдрома кишечной недостаточности предшествовала гипотония (систолическое давление <70 мм рт. ст.) длительностью более 80 минут. Ишемически-реперфузионное поражение стенки тонкой кишки приводило к нарушению ее барьерной функции и наводнению крови внутрикишечными токсинами, повышая системный эндотоксикоз достоверно более значимо, чем у пациентов без синдрома кишечной недостаточности. У пациентов с синдромом кишечной недостаточности системные дисфункции развивались в 90% (65/72) случаев, а у пациентов без него – лишь в 11% (4/38) случаев (р<0,05). Это объясняется тем, что при синдроме кишечной недостаточности дополнительное длительное токсическое воздействие на печень и почки приводит к срыву адаптационных возможностей их основных функций, нарушение которых крайне отрицательно влияет на показатели гомеостаза. Летальность в группе с синдромом кишечной недостаточности составила 15% (11/72), а летальность в группе без синдрома кишечной недостаточности – 5% (2/38).
Заключение. У 65% пациентов с тяжелыми кровотечениями из гастродуоденальных язв развивается синдром кишечной недостаточности, играющий значительную негативную роль в потенцировании системного эндотоксикоза, как следствие, в формировании системных дисфункций и исходе заболевания в целом.

Ключевые слова: синдром кишечной недостаточности, тяжелые кровотечения, ишемически-реперфузионное поражение, стенка тонкой кишки, «барьерная» функция, э
с. 161-167 оригинального издания
Список литературы
  1. Степанов ЮМ, Залевский ВИ, Косинский АВ. Желудочно-кишечные кровотечения: Днепропетровск: Лира; 2011. 270 с. http://www.booksmed.com/gastroenterologiya/2590-zheludochno-kishechnye-krovotecheniya-stepanov.html
  2. Feinman M, Haut ER. Upper gastrointestinal bleeding. Surg Clin North Am. 2014 Feb;94(1):43-53. doi: 10.1016/j.suc.2013.10.004
  3. Гельфанд БР, Салтанов АИ. Интенсивная терапия: нац рук. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2009. Т. I. 960 с. http://www.webmedinfo.ru/intensivnaya-terapiya-nacionalnoe-rukovodstvo-gelfand-b-r-saltanov-a-i-2-toma.html
  4. Sarsu SB, Ozokutan BH, Tarakcioglu M, Sarı I, Bağcı C. Effects of leptin on intestina lischemia-reperfusion injury. Indian J Surg. 2015 Dec;77(Suppl 2):351-55. doi: 10.1007/s12262-013-0836-1
  5. Cosse C, Sabbagh C, Kamel S, Galmiche A, Regimbeau JM. Procalcitonin and intestinal ischemia: a review of the literature. World J Gastroenterol. 2014 Dec 21;20(47):17773-78. doi: 10.3748/wjg.v20.i47.17773
  6. Климович ИН, Маскин СС, Снигур ГЛ, Абрамов ПВ, Павлов АВ. Кишечная недостаточность в патогенезе эндотоксикоза при геморрагической гипотензии. Новости Хирургии. 2018;26(3):276-83. doi: 10.18484/2305-0047.2018.3.276
  7. Peng Z, Ban K, Wawrose RA, Gover AG, Kozar RA. Protection by enteral glutamine is mediated by intestinal epithelial cell peroxisome proliferator-activated receptor-γ during intestinal ischemia/reperfusion. Shock. 2015 Apr;43(4):327-33. doi: 10.1097/SHK.0000000000000297
  8. Gordeeva AE, Temnov AA, Charnagalov AA, Sharapov MG, Fesenko EE, Novoselov VI. Protective effect of peroxiredoxin 6 in ischemia/reperfusion-induced damage of small intestine. Dig Dis Sci. 2015 Dec;60(12):3610-19. doi: 10.1007/s10620-015-3809-3
  9. Гостищев ВК, Евсеев МА. Гастродуоденальные кровотечения язвенной этиологии (патогенез, диагностика, лечение): рук. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2008. 384 с. http://www.studmed.ru/gostischev-vk-evseev-ma-gastroduodenalnye-krovotecheniya-yazvennoy-etiologii_3c8448ee896.html
  10. Камышников ВС, ред. Методы клинических лабораторных исследований. Москва, РФ: МЕДпресс-информ, 2009. 751 с. http://www.chitalkino.ru/kamyshnikov-v-s/metody-klinicheskikh-laboratornykh-issledovaniy/
  11. Кудаева ИВ, Маснавиева ЛБ. Методы оценки оксидативного статуса в лабораторной практике. Мед Алфавит. 2015;1(2):14-18. https://elibrary.ru/item.asp?id=23578003
  12. Костюк ВА, Потапович АИ, Ковалева ЖВ. Простой и чувствительный метод определения активности супероксиддисмутазы, основанный на реакции окисления кверцетина. Вопр Мед Химии. 1990;36(2):88-91. http://pbmc.ibmc.msk.ru/index.php/ru/article/PBMC-1990-36-2-88-ru
  13. Петри А, Сэбин К. Наглядная медицинская статистика. Леонов ВП, ред. Москва, РФ: ГЭОТАР-Медиа; 2009. 168 с.
Адрес для корреспонденции:
400131, Российская Федерация,
г. Волгоград, площадь Павших борцов, д. 1,
Волгоградский государственный
медицинский университет,
кафедра госпитальной хирургии,
тел. раб.: 8(442) 71-87-62,
тел. моб.: +7 905-336-23-69,
e-mail: klimovichigor1122@yandex.ru
Климович Игорь Николаевич
Cведения об авторах:
Климович Игорь Николаевич, д.м.н., профессор кафедры госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-7933-2635
Маскин Сергей Сергеевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-5275-4213
Абрамов Павел Вячеславович, аспирант, кафедра госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8673-2581
Павлов Александр Владимирович, к.м.н., ассистент кафедры госпитальной хирургии, Волгоградский государственный медицинский университет, г. Волгоград, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-1497-4231

ЧЕЛЮСТHО-ЛИЦЕВАЯ ХИРУРГИЯ

В.В. АЛЕКСЕЕВА, А.В. ЛУПЫРЬ, Н.А. ЮРЕВИЧ, Р.С. НАЗАРЯH, В.В. ГАРГИH

ЗHАЧЕHИЕ АHАТОМИЧЕСКОЙ ИЗМЕHЧИВОСТИ ВЕРХHЕЧЕЛЮСТHОЙ ПАЗУХИ И КОМПОHЕHТОВ ОСТИОМЕАТАЛЬHОГО КОМПЛЕКСА ДЛЯ ПРОВЕДЕHИЯ ОПЕРАТИВHОГО ЛЕЧЕHИЯ

Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков,
Украина

Цель. Определение анатомической изменчивости верхнечелюстной пазухи и компонентов остиомеатального комплекса, а также подбор на основании полученных данных оптимального доступа к зоне гайморовой пазухи для выбора метода лечения гайморита, позволяющего минимизировать интра- и постоперационные осложнения.
Материал и методы. Изучены результаты исследований околоносовых пазух 30 пациентов, проведенных на спиральном компьютерном томографе. Среди них 10 пациентов с субтотальным снижением пневматизации верхнечелюстного синуса и 10 пациентов с гиперплазией слизистой оболочки. Контрольная группа – 10 СКТ здоровых лиц. Определены средний объем, плотность костной стенки верхнечелюстного синуса, средние размеры нижней носовой раковины, размеры, плотность крючковидного отростка в физиологических и патологических условиях, корреляция между этими показателями.
Результаты. Значительная корреляция (r=0,96, 0,96, 0,95 и 0,9 в физиологическом состоянии и r=0,95, 0,94, 0,97 и 0,91 при гайморите) была отмечена между объемом, толщиной и плотностью стенок верхнечелюстного синуса. Умеренная корреляция – между объемом синуса, толщиной и плотностью крючковидного отростка, объемом синуса и продольным размером нижней носовой раковины в неизмененной пазухе (r=0,65, 0,68 и 0,66). Очень сильная корреляция – между толщиной верхней стенки и объемом синуса (r=0,96). Сильная положительная линейная зависимость (r=0,72) отмечена между объемом и толщиной медиальной стенки (р<0,05). Достоверная (р=0,01) сильная (r=0,75) взаимосвязь – между толщиной крючковидного отростка и средним объемом синуса. Очень сильная линейная корреляция – между плотностью средней и верхней стенки гайморовой пазухи в физиологических и патологических условиях (r=0,9 и 0,84).
Заключение. Спиральная компьютерная томография – диагностически значимый метод исследования верхнечелюстных синусов. Определены параметры околоносовых пазух, необходимые для успешной эндоскопической ринохирургии. Полученные данные помогают выбрать доступ во время эндоскопических операций, предотвратить интра-, послеоперационные осложнения, спрогнозировать вероятность внутричерепного или внутриглазничного распространения патологического процесса.

Ключевые слова: околоносовые пазухи, верхнечелюстной синус, спиральноя компьютерная томография, плотность, крючковидный отросток, нижняя носовая раковин
с. 168-176 оригинального издания
Список литературы
  1. Shcherbakov DA, Kryukov AI, Krasnozhen VN, Hukumatshoev AI, Karimova AI. Certain morphometric characteristics of the normal maxillary sinus. [Article in Russian]; Abstract available in Russian from the publisher Vestn Otorinolaringol. 2017;82(4):44-47. doi: 10.17116/otorino201782444-47
  2. Denga O, Pyndus T, Gargin V, Schneider S. Influence of metabolic syndrome on condition of microcirculatory bed of oral cavity. Georgian Med News. 2017 Dec;(273):99-104. http://www.geomednews.org/
  3. Tahmasbi-Arashlow M, Barghan S, Bennett J, Katkar RA, Nair MK. Arrested pneumatization of the sphenoid sinus on large field-of-view cone beam computed tomography studies. Dent J (Basel). 2015 May 11;3(2):67-76. doi: 10.3390/dj3020067
  4. Fokkens WJ, Bachert C, Bernal-Sprekelsen M, Bousquet J, Djandji M, Dorenbaum A, Hakimi-Mehr D, Hendry S, Hopkins C, Leunig A, Mannent L, Mucha D, Onerci M, Pugin B, Toppila-Salmi S, Rowe P, Seys SF, Stimson S, Strzembosz A, Hellings PW. Rhinology Future Debates, an EUFOREA Report. Rhinology. 2017 Dec 1;55(4):298-304. doi: 10.4193/Rhin17.221
  5. Kovach I, Buniatian K, Makarevych A, Verbyts’ka A, Gargin V. Influence of tricalcium silicate on course of traumatic pulpitis. Georgian Med News. 2018 Mar;(276):130-34. http://www.geomednews.org/
  6. Drumond JP, Allegro BB, Novo NF, de Miranda SL, Sendyk WR. Evaluation of the prevalence of maxillary sinuses abnormalities through spiral computed tomography (CT). Int Arch Otorhinolaryngol. 2017 Apr;21(2):126-33. doi: 10.1055/s-0036-1593834
  7. Farneti P, Sciarretta V, Macrì G, Piccin O, Pasquini E. Silent sinus syndrome and maxillary sinus atelectasis in children. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2017 Jul;98:150-57. doi: 10.1016/j.ijporl.2017.05.005
  8. Bhushan B, Rychlik K, Schroeder JW Jr. Development of the maxillary sinus in infants and children. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2016 Dec;91:146-51. doi: 10.1016/j.ijporl.2016.10.022
  9. Пискунов СЗ, Пискунов ИС, Пискунов ВС. Анатомические особенности, функциональное и клиническое значение крючковидного отростка. Рос Ринология. 2014;22(3):26-32. https://www.mediasphera.ru/issues/rossijskaya-rinologiya/2014/3/030869-5474201436
  10. Mendiratta V, Baisakhiya N, Singh D, Datta G, Mittal A, Mendiratta P. Sinonasal anatomical variants: CT and endoscopy study and its correlation with extent of disease. Indian J Otolaryngol Head Neck Surg. 2016 Sep;68(3):352-58. doi: 10.1007/s12070-015-0920-x
  11. Socher JA, Mello J, Baltha BB. Tomographical findings in adult patients undergoing endoscopic sinus surgery revision. Int Arch Otorhinolaryngol. 2018 Jan;22(1):73-80. doi: 10.1055/s-0037-1601417
  12. Liu J, Dai J, Wen X, Wang Y, Zhang Y, Wang N. Imaging and anatomical features of ethmomaxillary sinus and its differentiation from surrounding air cells. Surg Radiol Anat. 2018 Feb;40(2):207-15. doi: 10.1007/s00276-018-1974-8
  13. Magill D, Beckmann N, Felice MA, Yoo T, Luo M, Mupparapu M. Investigation of dental cone-beam CT pixel data and a modified method for conversion to Hounsfield unit (HU). Dentomaxillofac Radiol. 2018 Feb;47(2):20170321. doi: 10.1259/dmfr.20170321
  14. Baimenov AZ. The early prophylaxis of postoperative stenosis by means of modified endonasal functional dacryocystorhinostomy. Vestn Otorinolaringol. 2015;80(2):60-62. doi: 10.17116/otorino201580260-62
  15. Kaya M, Çankal F, Gumusok M, Apaydin N, Tekdemir I. Role of anatomic variations of paranasal sinuses on the prevalence of sinusitis: Computed tomography findings of 350 patients. Niger J Clin Pract. 2017 Nov;20(11):1481-88. doi: 10.4103/njcp.njcp_199_16
Адрес для корреспонденции:
61022, Украина,
г. Харьков, проспект Науки, д. 4,
Харьковский национальный
медицинский университет,
кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии,
тел.: +380982589078,
e-mail: vik13052130@i.ua,
Алексеева Виктория Викторовна
Cведения об авторах:
Лупырь Андрей Викторович, д.м.н., доцент кафедры отоларингологии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0002-9896-163X
Алексеева Виктория Викторовна, ассистент кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
https://orcid.org/0000-0001-5272-8704
Юревич Надежда Александровна, к.м.н., доцент кафедры отоларингологии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0001-7340-2850
Назарян Розана Степановна, д.м.н, профессор, заведующий кафедрой стоматологии детского возраста, детской челюстно-лицевой хирургии и имплантологии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0002-0005-8777
Гаргин Виталий Витальевич, д.м.н, профессор кафедры патологической анатомии, Харьковский национальный медицинский университет, г. Харьков, Украина.
http://orcid.org/0000-0001-8194-4019

ОHКОЛОГИЯ

И.А. ИЛЬИH

РЕЗУЛЬТАТЫ ПОВТОРHОЙ ТОЛСТОКИШЕЧHОЙ ПЛАСТИКИ ПИЩЕВОДА ПРИ ХИРУРГИЧЕСКОМ ЛЕЧЕHИИ КАРЦИHОМ ПИЩЕВОДА И ПИЩЕВОДHО-ЖЕЛУДОЧHОГО ПЕРЕХОДА

Республиканский научно-практический центр онкологии
и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Оценить результаты повторной толстокишечной пластики пищевода при хирургическом лечении карцином пищевода и пищеводно-желудочного перехода.
Материал и методы. Повторные загрудинные толстокишечные пластики пищевода после разобщающих операций по поводу осложнений первичной реконструкции пищевода желудком или тонкой кишкой при хирургическом лечении карцином пищевода и пищеводно-желудочного перехода выполнены у 40 пациентов. Плоскоклеточный рак пищевода был представлен в 52,5% (21/40) наблюдений и аденокарцинома пищеводно-желудочного перехода — в 47,5% (19/40). Средний возраст пациентов составил 56,0 (52,0; 63,0) лет, индекс массы тела — 21,4 (18,9; 24,5) Ед. Пациенты мужского пола преобладали над женским 90% (36/40) и 10% (4/40) человек соответственно. Повторным реконструкциям предшествовали ранее выполненные разобщающие операции по поводу осложнений первичной пластики пищевода желудком или тонкой кишкой. Резекция пищеводно-желудочного анастомоза выполнена у 57,5% (23/40) пациентов, удаление гастротрансплантата – у 7,5% (3/40), демукозация пищевода с резекцией осложненного анастомоза – у 35% (14/40).
Результаты. Длительность вмешательств составила 345,0 (310,0; 407,5) минут, объем кровопотери 400,0 (300,0; 500,0) мл, продолжительность стационарного лечения — 27,5 (21,0; 40,5) дня. Несостоятельность пищеводно-толстокишечного анастомоза и некроз проксимальных отделов трансплантата выявлялись клинически и рентгенологически на 8-е сутки после операции. Несостоятельность анастомоза развилась в 12,5% (5/40) наблюдений, некроз — в 5% (2/40). Поздние рубцовые стриктуры пищеводно-толстокишечного анастомоза, диагностированные по данным фиброэзофагоколоноскопии спустя 3 месяца после повторной эзофагопластики, сформировались в 7,5% (3/40) наблюдений. 30- и 60-дневная летальность в группах составила – 7,5% (3/40) и 10% (4/40) случаев соответственно. Общая 5-летняя выживаемость пациентов равнялась 26,9%.
Заключение. Повторная толстокишечная пластика пищевода при хирургическом лечении карцином пищевода и пищеводно-желудочного перехода является спасительной процедурой для пациентов, перенесших разобщающие (стомирующие) оперативные вмешательства, позволяющей добиться удовлетворительных отдаленных результатов лечения.

Ключевые слова: карцинома пищевода, карцинома пищеводно-желудочного перехода, повторная толстокишечная пластика пищевода, загрудинный путь проведения т
с. 177-187 оригинального издания
Список литературы
  1. Vijay K, Godara R, Vijayvergia V. Failed Gastric Pull up after Esophagectomy Managed by Colonic Interposition. Indian J Surg. 2013 Jun;75(Suppl 1):347-49. doi: 10.1007/s12262-012-0662-x
  2. Kesler KA, Pillai ST, Birdas TJ, Rieger KM, Okereke IC, Ceppa D, Socas J, Starnes SL. “Supercharged” isoperistaltic colon interposition for long-segment esophageal reconstruction. Ann Thorac Surg. 2013 Apr;95(4):1162-68; discussion 1168-69. doi: 10.1016/j.athoracsur.2013.01.006
  3. Reslinger V, Tranchart H, D’Annunzio E, Poghosyan T, Quero L, Munoz-Bongrand N, Corte H, Sarfati E, Cattan P, Chirica M. Esophageal reconstruction by colon interposition after esophagectomy for cancer analysis of current indications, operative outcomes, and long - term survival. J Surg Oncol. 2016 Feb;113(2):159-64. doi: 10.1002/jso.24118
  4. Sacak B, Orfaniotis G, Nicoli F, Liu EW, Ciudad P, Chen SH, Chen HC. Back-up procedures following complicated gastric pull-up procedure for esophageal reconstruction: Salvage with intestinal flaps. Microsurgery. 2016 Oct;36(7):567-72. doi: 10.1002/micr.22520
  5. Fisher RA, Griffiths EA, Evison F, Mason RC, Zylstra J, Davies AR, Alderson D, Gossage JA. A national audit of colonic interposition for esophageal replacement. Dis Esophagus. 2017 May 1;30(5):1-10. doi: 10.1093/dote/dow003
  6. Awsakulsutthi S, Havanond C. A retrospective study of anastomotic leakage between patients with and without vascular enhancement of esophageal reconstructions with colon interposition: Thammasat University Hospital experience. Asian J Surg. 2015 Jul;38(3):145-49. doi: 10.1016/j.asjsur.2015.01.005
  7. Uchiyama H, Shirabe K, Morita M, Kakeji Y, Taketomi A, Soejima Y, Yoshizumi T, Ikegami T, Harada N, Kayashima H, Morita K, Maehara Y. Expanding the applications of microvascular surgical techniques to digestive surgeries: a technical review. Surg Today. 2012 Jan;42(2):111-20. doi: 10.1007/s00595-011-0032-5
  8. Ильин ИА, Малькевич ВТ. Повторная и отсроченная эзофагопластика в лечении карцином пищевода и пищеводно-желудочного перехода. Изв НАН Беларуси. Сер мед наук. 2016;(2):15-22.
  9. Saeki H, Morita M, Harada N, Egashira A, Oki E, Uchiyama H, Ohga T, Kakeji Y, Sakaguchi Y, Maehara Y. Esophageal replacement by colon interposition with microvascular surgery for patients with thoracic esophageal cancer: the utility of superdrainage. Dis Esophagus. 2013 Jan;26(1):50-56. doi: 10.1111/j.1442-2050.2012.01327.x
  10. Kassis ES, Kosinski AS, Ross P Jr, Koppes KE, Donahue JM, Daniel VC. Predictors of anastomotic leak after esophagectomy: an analysis of the society of thoracic surgeons general thoracic database. Ann Thorac Surg. 2013 Dec;96(6):1919-26. doi: 10.1016/j.athoracsur.2013.07.119
  11. Luketich JD, Pennathur A, Awais O, Levy RM, Keeley S, Shende M, Christie NA, Weksler B, Landreneau RJ, Abbas G, Schuchert MJ, Nason KS. Outcomes after minimally invasive esophagectomy: review of over 1000 patients. Ann Surg. 2012 Jul;256(1):95-103. doi: 10.1097/SLA.0b013e3182590603
  12. Klink CD, Binnebösel M, Schneider M, Ophoff K, Schumpelick V, Jansen M. Operative outcome of colon interposition in the treatment of esophageal cancer: a 20-year experience. Surgery. 2010 Apr;147(4):491-6. doi: 10.1016/j.surg.2009.10.045
  13. Brown J, Lewis WG, Foliaki A, Clark GWB, Blackshaw GRJC, Chan DSY. Colonic Interposition After Adult Oesophagectomy: Systematic Review and Meta-analysis of Conduit Choice and Outcome. J Gastrointest Surg. 2018 Jun;22(6):1104-11. doi: 10.1007/s11605-018-3735-8
  14. Bakshi A, Sugarbaker DJ, Burt BM. Alternative conduits for esophageal replacement. Ann Cardiothorac Surg. 2017 Mar;6(2):137-43. doi: 10.21037/acs.2017.03.07
  15. Ceroni M, Norero E, Henríquez JP, Viñuela E, Briceño E, Martínez C, Aguayo G, Araos F, GonzÁlez P, Díaz A, Caracci M. Total esophagogastrectomy plus extended lymphadenectomy with transverse colon interposition: a treatment for extensive esophagogastric junction cancer. World J Hepatol. 2015 Oct 8;7(22):2411-17. doi: 10.4254/wjh.v7.i22.2411
  16. Малькевич ВТ, Жарков ВВ, Оситрова ЛИ, Курчин ВП, Баранов АЮ, Ильин ИА. Новые подходы к лечению внутриплевральных осложнений в хирургии рака пищевода. Новости Хирургии. 2012;20(3):74-80. http://www.surgery.by/pdf/full_text/2012_3_12_ft.pdf
  17. Океанов АЕ, Моисеев ПИ, Левин ЛФ, Евмененко АА, Суконко ОГ. (ред). Статистика онкологических заболеваний в Республике Беларусь (2007-2016)=Statistics of cancer diseases in the Republic of Belarus (2007-2016): аналитический обзор по данным Белорусского канцер-регистра. Минск, РБ: РНПЦ ОМР; 2017. 286 с.
Адрес для корреспонденции:
223040, Республика Беларусь,
Минская область, Минский район,
агрогородок Лесной 2,
Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии
им. Н.Н. Александрова,
хирургический отдел,
тел. раб.: 8 017 389 95 32,
e-mail: ileus@tut.by,
Ильин Илья Анатольевич
Cведения об авторах:
Ильин Илья Анатольевич, к.м.н., ведущий научный сотрудник хирургического отдела, государственное учреждение «Республиканский научно-практический центр онкологии и медицинской радиологии им. Н.Н. Александрова», Минская область, Минский район, агрогородок Лесной 2, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-5314-7618

АHЕСТЕЗИОЛОГИЯ-РЕАHИМАТОЛОГИЯ

В.Ю. ЗЕМКО 1, В.К. ОКУЛИЧ 1, А.М. ДЗЯДЗЬКО 2

ФАКТОРЫ ФЕHОТИПИЧЕСКОЙ И ГЕHОТИПИЧЕСКОЙ РЕЗИСТЕHТHОСТИ HАИБОЛЕЕ ПРОБЛЕМHЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ИHФЕКЦИИ В ОТДЕЛЕHИИ РЕАHИМАЦИИ И ИHТЕHСИВHОЙ ТЕРАПИИ

Витебский государственный медицинский университет 1, г. Витебск,
Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии 2, г. Минск,
Республика Беларусь

Цель. Установить факторы фенотипической и генотипической резистентности наиболее проблемных возбудителей инфекции в отделении реанимации и интенсивной терапии.
Материал и методы. Проведено комплексное обследование 99 пациентов отделения реанимации и интенсивной терапии, из мокроты которых выделено 224 клинических изолята. Для изолятов Klebsiella pneumonia выполнена детекция генов карбапенемаз методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени и определены минимальные подавляющие концентрации антибиотиков для микроорганизмов в планктонной форме и форме биопленки методом двукратных серийных разведений.
Результаты. В структуре исследованных изолятов чаще встречались Acinetobacter spp. (32,6%), Klebsiella pneumonia (33,5%), Pseudomonas aeruginosa (14,7%). 91,4% изолятов Klebsiella pneumoniae обладали генами резистентности, причем в большинстве случаев – геном резистентности OXA-48 (80%). Все исследованные изоляты умеренно или хорошо формировали биопленку, при этом среди изученных микроорганизмов данная способность наиболее выражена у Proteus mirabilis. Все изоляты как в планктонной форме, так и в форме биопленки были чувствительны к тигециклину (100%), проявив устойчивость к карбапенемам в 94,7%, к цефалоспоринам – в 100% случаев. Для 90% исследованных изолятов минимальная подавляющая концентрация для тигециклина и ципрофлоксацина в составе биопленки не меняется, но возрастает в среднем для моксифлоксацина в 1,3 раза и меропенема в 1,2 раза.
Заключение. Установлены факторы фенотипической и генотипической резистентности наиболее проблемных возбудителей инфекции в отделении реанимации и интенсивной терапии. Установлена взаимосвязь антибиотикорезистентности Klebsiella pneumonia с продукцией карбапенемаз. Большая часть изолятов Klebsiella pneumoniae, резистентных к карбапенемам и цефалоспоринам, имела ассоциации генов: OXA-48 и CTX-M (37,1%), NDM и CTX-M (2,9%), NDM и OXA-48 (37,1%), CTX-M и OXA-48 (11,4%). Идентификация генов резистентности, определяющих синтез карбапенемаз и цефалоспориназ, позволяет исключить антибиотики, разрушаемые данными ферментами, из алгоритмов антибактериальной терапии.

Ключевые слова: антибиотикорезистентность, Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter spp., Pseudomonas aeruginosa, формирование биопленок, гены резистентности
с. 188-195 оригинального издания
Список литературы
  1. Mukhopadhyay C. Infection Control in Intensive Care Units. Indian J Respir Care. 2018;(7):14-21. doi: 10.4103/ijrc.ijrc_9_17
  2. Ibrahim EH, Sherman G, Ward S, Fraser VJ, Kollef MH. The influence of inadequate antimicrobial treatment of bloodstream infections on patient outcomes in the ICU setting. Chest. 2000 Jul;118(1):146-55. doi: 10.1378/chest.118.1.146
  3. Яковлев СВ, Суворова МП, Белобородов ВБ, Басин ЕЕ, Елисеева ЕВ, Ковеленов СВ, Портнягина УС, Рог АА, Руднов ВА, Барканова ОН. Распространённость и клиническое значение нозокомиальных инфекций в лечебных учреждениях России: исследование Эргини. Антибиотики и Химиотерапия. 2016;61(5-6):32-42. https://cyberleninka.ru/article/n/rasprostranyonnost-i-klinicheskoe-znachenie-nozokomialnyh-infektsiy-v-lechebnyh-uchrezhdeniyah-rossii-issledovanie-ergini
  4. Kumar A, Ellis P, Arabi Y, Roberts D, Light B, Parrillo JE, Dodek P, Wood G, Kumar A, Simon D, Peters C, Ahsan M, Chateau D. Initiation of inappropriate antimicrobial therapy results in a fivefold reduction of survival in human septic shock. Chest. 2009 Nov;136(5):1237-48. doi: 10.1378/chest.09-0087
  5. Зубков МН. Роль карбапенемов в условиях эскалации антибиотикорезистентности грамотрицательных бактерий. РМЖ. 2008;16(2): 106-12. https://www.rmj.ru/articles/antibiotiki/Roly_karbapenemov_v_usloviyah_eskalacii_antibiotikorezistentnosti_gramotricatelynyh_bakteriy/#ixzz5idYgvUxm
  6. Земко ВЮ, Окулич ВК, Дзядзько АМ. Мониторинг антибиотикорезистентности микроорганизмов в отделении реанимации и интенсивной терапии многопрофильного стационара. Трансплантология. 2018;10(4):284-97. doi: 10.23873/2074-0506-2018-10-4-284-297
  7. Лазарева ИВ, Агеевец ВА, Ершова ТА, Зуева ЛП, Гончаров АЕ, Дарьина МГ, Светличная ЮС, Усков АН, Сидоренко СВ. Распространенность и антибактериальная резистентность грамотрицательных бактерий, продуцентов карбапенемаз, в Санкт-Петербурге и некоторых других регионах Российской Федерации. Антибиотики и Химиотерапия. 2016;61:11-12. https://cyberleninka.ru/article/v/rasprostranenie-i-antibakterialnaya-rezistentnost-gramotritsatelnyh-bakteriy-produtsentov-karbapenemaz-v-sankt-peterburge-i
  8. Воробей ЕС, Воронкова ОС, Винников АИ. Бактериальные биопленки. Quorum sensing – «Чувство кворума» у бактерий в биопленках. Вiсник Днiпропетровського унiверситету. Бiологiя. Екологiя. 2012;20 (1):13-22. https://cyberleninka.ru/article/n/bakterialnye-bioplenki-quorum-sensing-chuvstvo-kvoruma-u-bakteriy-v-bioplenkah
  9. Глушанова НА, Блинов АИ, Алексеева НБ. Бактериальные биопленки в инфекционной патологии человека. Медицина в Кузбассе. 2015:30-35. https://cyberleninka.ru/article/n/bakterialnye-bioplenki-v-infektsionnoy-patologii-cheloveka
  10. Лопухов ЛВ, Эйдельштейн МВ. Полимеразная цепная реакция в клинической микробиологической диагностике. Клин Микробиология и Антимикробная Химиотерапия. 2000;4(2):96-106. http://www.antibiotic.ru/cmac/2000_2_3/096.htm
  11. Коломиец НД, Тонко ОВ, Сероокая ТИ, Марейко АМ, Литуновская ЛГ, Ермакова ГС, Колодкина ВЛ, Сергейчик НЛ, Левшина НH, Славинская АА, Точко НИ, Войтик СБ, Новомлиянова ЛВ, Шитикова ПВ, Клюйко HЛ, Куличковская ИВ. Микробиологические методы исследования биологического материала: инструкция по применению; 075-0210. Минск, РБ: Дикта; 2010; 75 с. http://gocb.by/assets/files/methodical/LS/75-0210.pdf
  12. Окулич ВК, Кабанова АА, Плотников ФВ. Микробные биопленки в клинической микробиологии и антибактериальной терапии: моногр. Витебск, РБ; 2017. 300 с. http://elib.vsmu.by/handle/123/12846
  13. The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters. Version 8.1, 2018. http://www.eucast.org
  14. Hamprecht A, Gottig S. Treatment of infections caused by carbapenem-resistant Enterobacteriaceae. Curr Treat Options Infect Dis. 2014;6(4):425-38. doi: 10.1007/s40506-014-0029-x
  15. Saini R, Saini S, Sharma S. Biofilm: A dental microbial infection/ J Nat Sci Biol Med. 2011 Jan-Jun;2(1):71-75. doi: 10.4103/0976-9668.82317
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр-т Фрунзе 27а,
Витебский государственный
медицинский университет,
кафедра анестезиологии
и реаниматологии с курсом ФПК и ПК,
тел. моб. +375291460799,
e-mail: torinet@tut.by,
Земко Виктория Юрьевна
Cведения об авторах:
Земко Виктория Юрьевна, аспирант кафедры анестезиологии и реаниматологии с курсом ФПК и ПК, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-6753-2074
Окулич Виталий Константинович, к.м.н., доцент кафедры клинической микробиологии, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-8226-6405
Дзядзько Александр Михайлович, д.м.н., заведующий отделом анестезиологии и реанимации, Минский научно-практический центр хирургии, трансплантологии и гематологии, г. Минск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1965-1850

ОБЗОРЫ

И.В. МАЙБОРОДИH 1, А.И. ШЕВЕЛА 1, В.В. МОРОЗОВ 1, Т.В. МИХЕЕВА 1, Н.Ф. ФИГУРЕHКО 1, Р.В. МАСЛОВ 1, В.И. МАЙБОРОДИHА 2

ВЛИЯHИЕ ЭКСТРАЦЕЛЛЮЛЯРHЫХ ВЕЗИКУЛ (ЭКЗОСОМ) МЕЗЕHХИМАЛЬHЫХ СТРОМАЛЬHЫХ КЛЕТОК HА РЕГЕHЕРАЦИЮ КОСТHОЙ ТКАHИ

Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН 1,
Институт молекулярной патологии и патоморфологии
Федерального исследовательского центра фундаментальной и трансляционной медицины 2,
г. Новосибирск,
Российская Федерация

Мезенхимальные стволовые/стромальные клетки (МСК) широко использовались для тканевой регенерации, в том числе и для восстановления костных дефектов. Однако недостатки применения МСК, включая ограниченный срок существования в тканях, стали препятствием для дальнейшей прямой трансплантации МСК.
Необходимо создание новых способов клеточной терапии, не имеющих недостатков прямого применения МСК, но с такой же эффективностью воздействия на регенерацию костной ткани.
Клетки влияют друг на друга и обмениваются функциональными белками и генетическим материалом через секрецию экзосом, которые также могут применяться для воздействия на регенерацию тканей. Экзосомы усиливают пролиферацию, миграцию и выступают в качестве индукторов дифференцирования МСК в определенном направлении, в том числе и остеогенном, что приводит к значительному ускорению репарации костных дефектов. Возможным механизмом оптимизации репарации тканей экзосомами является доставка микроРНК и различных регулирующих цитокинов. Действие экзосом в большей мере сходно с эффектами МСК. Определенные перспективы имеет создание экзосом с заранее заданными свойствами. Вместе с этим оценка терапевтического потенциала и использование в будущих клинических испытаниях секретируемых различными клетками экстрацеллюлярных везикул требуют их полной характеристики, стандартизации строго определенных условий хранения и получения, удаления ксеногенных и других, связанных с источником, веществ.
Применение экзосом имеет большой потенциал для репаративной медицины, в частности для ускорения регенерации костной ткани, и открывает новые пути медицинских исследований.

Ключевые слова: регенерация костной ткани, мезенхимальные стромальные клетки, экзосомы, микровезикулы, взаимодействие клеток
с. 196-203 оригинального издания
Список литературы
  1. Майбородин ИВ, Матвеева ВА, Колесников ИС, Дровосеков МН, Тодер МС, Шевела АИ. Регенерация поврежденной кости нижней челюсти крыс после использования аутологичных стромальных стволовых клеток костномозгового происхождения, адсорбированных на фибриновом сгустке. Морфология. 2011;140(6):79-85. https://elibrary.ru/download/elibrary_17112219_63292977.pdf
  2. Lu Z, Chen Y, Dunstan C, Roohani-Esfahani S, Zreiqat H. Priming adipose stem cells with tumor necrosis factor-alpha preconditioning potentiates their exosome efficacy for bone regeneration. Tissue Eng Part A. 2017 Nov;23(21-22):1212-20. doi: 10.1089/ten.tea.2016.0548
  3. Takeda YS, Xu Q. Neuronal differentiation of human mesenchymal stem cells using exosomes derived from differentiating neuronal cells. PLoS One. 2015 Aug 6;10(8):e0135111. doi: 10.1371/journal.pone.0135111
  4. Pachler K, Lener T, Streif D, Dunai ZA, Desgeorges A, Feichtner M, Öller M, Schallmoser K, Rohde E, Gimona M. A Good manufacturing practice-grade standard protocol for exclusively human mesenchymal stromal cell-derived extracellular vesicles. Cytotherapy. 2017 Apr;19(4):458-72. doi: 10.1016/j.jcyt.2017.01.001
  5. Lener T, Gimona M, Aigner L, Börger V, Buzas E, Camussi G, Chaput N, Chatterjee D, Court FA, Del Portillo HA, O’Driscoll L, Fais S, Falcon-Perez JM, Felderhoff-Mueser U, Fraile L, Gho YS, Görgens A, Gupta RC, Hendrix A, Hermann DM, Hill AF, Hochberg F, Horn PA, de Kleijn D, Kordelas L, Kramer BW, Krämer-Albers EM, Laner-Plamberger S, Laitinen S, Leonardi T, Lorenowicz MJ, Lim SK, Lötvall J, Maguire CA, Marcilla A, Nazarenko I, Ochiya T, Patel T, Pedersen S, Pocsfalvi G, Pluchino S, Quesenberry P, Reischl IG, Rivera FJ, Sanzenbacher R, Schallmoser K, Slaper-Cortenbach I, Strunk D, Tonn T, Vader P, van Balkom BW, Wauben M, Andaloussi SE, Théry C, Rohde E, Giebel B. Applying extracellular vesicles based therapeutics in clinical trials - an ISEV position paper. J Extracell Vesicles. 2015 Dec 31;4:30087. doi: 10.3402/jev.v4.30087
  6. Doeppner TR, Herz, Görgens A, Schlechter J, Ludwig AK, Radtke S, de Miroschedji K, Horn PA, Giebel B, Hermann DM. Extracellular vesicles improve post-stroke neuroregeneration and prevent postischemic immunosuppression. Stem Cells Transl Med. 2015 Oct;4(10):1131-43. doi: 10.5966/sctm.2015-0078
  7. Huang CC, Narayanan R, Alapati S, Ravindran S. Exosomes as biomimetic tools for stem cell differentiation: applications in dental pulp tissue regeneration. Biomaterials. 2016 Dec;111:103-15. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.09.029
  8. Narayanan R, Huang CC, Ravindran S. Hijacking the cellular mail: exosome mediated differentiation of mesenchymal stem cells. Stem Cells Int. 2016;2016:3808674. doi: 10.1155/2016/3808674
  9. Furuta T, Miyaki S, Ishitobi H, Ogura T, Kato Y, Kamei N, Miyado K, Higashi Y, Ochi M. Mesenchymal stem cell-derived exosomes promote fracture healing in a mouse model. Stem Cells Transl Med. 2016 Dec;5(12):1620-30. doi: 10.5966sctm.2015-0285
  10. Qin Y, Sun R, Wu C, Wang L, Zhang C. Exosome: a novel approach to stimulate bone regeneration through regulation of osteogenesis and angiogenesis. Int J Mol Sci. 2016 May 19;17(5). pii: E712. doi: 10.3390/ijms17050712
  11. Silva AM, Almeida MI, Teixeira JH, Maia AF, Calin GA, Barbosa MA, Santos SG. Dendritic cell-derived extracellular vesicles mediate mesenchymal stem/stromal cell recruitment. Sci Rep. 2017 May 10;7(1):1667. doi: 10.1038/s41598-017-01809-x
  12. Zhang J, Liu X, Li H, Chen C, Hu B, Niu X, Li Q, Zhao B, Xie Z, Wang Y. Exosomes/tricalcium phosphate combination scaffolds can enhance bone regeneration by activating the PI3K/Akt signaling pathway. Stem Cell Res Ther. 2016 Sep 20;7(1):136. doi: 10.1186/s13287-016-0391-3
  13. Zhang S, Chu WC, Lai RC, Lim SK, Hui JH, Toh WS. Exosomes derived from human embryonic mesenchymal stem cells promote osteochondral regeneration. Osteoarthritis Cartilage. 2016 Dec;24(12):2135-40. doi: 10.1016/j.joca.2016.06.022
  14. Wang KX, Xu LL, Rui YF, Huang S, Lin SE, Xiong JH, Li YH, Lee WY, Li G. The effects of secretion factors from umbilical cord derived mesenchymal stem cells on osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. PLoS One. 2015 Mar 23;10(3):e0120593. doi: 10.1371/journal.pone.0120593. eCollection 2015.
  15. Qi X, Zhang J, Yuan H, Xu Z, Li Q, Niu X, Hu B, Wang Y, Li X. Exosomes secreted by human-induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells repair critical-sized bone defects through enhanced angiogenesis and osteogenesis in osteoporotic rats. Int J Biol Sci. 2016 May 25;12(7):836-49. doi: 10.7150/ijbs.14809. eCollection 2016.
  16. Torreggiani E, Perut F, Roncuzzi L, Zini N, Baglìo SR, Baldini N. Exosomes: novel effectors of human platelet lysate activity. Eur Cell Mater. 2014 Sep 22;28:137-51; discussion 151. doi: 10.22203/eCM.v028a11
  17. Ekström K, Omar O, Granéli C, Wang X, Vazirisani F, Thomsen P. Monocyte exosomes stimulate the osteogenic gene expression of mesenchymal stem cells. PLoS One. 2013 Sep 18;8(9):e75227. doi: 10.1371/journal.pone.0075227. eCollection 2013.
  18. Namazi H, Mohit E, Namazi I, Rajabi S, Samadian A, Hajizadeh-Saffar E, Aghdami N, Baharvand H. Exosomes secreted by hypoxic cardiosphere-derived cells enhance tube formation and increase pro-angiogenic miRNA. J Cell Biochem. 2018 May;119(5):4150-60. doi: 10.1002/jcb.26621
  19. Selvasandran K, Makhoul G, Jaiswal PK, Jurakhan R, Li L, Ridwan K, Cecere R. A tumor necrosis factor-α and hypoxia-induced secretome therapy for myocardial repair. Ann Thorac Surg. 2018 Mar;105(3):715-23. doi: 10.1016/j.athoracsur.2017.09.005
  20. Gonzalez-King H, García NA, Ontoria-Oviedo I, Ciria M, Montero JA, Sepúlveda P. Hypoxia inducible factor-1α potentiates jagged 1-mediated angiogenesis by mesenchymal stem cell-derived exosomes. Stem Cells. 2017 Jul;35(7):1747-59. doi: 10.1002/stem.2618
  21. Hnatiuk AP, Ong SG, Olea FD, Locatelli P, Riegler J, Lee WH, Jen CH, De Lorenzi A, Giménez CS, Laguens R, Wu JC, Crottogini A. Allogeneic mesenchymal stromal cells overexpressing mutant human hypoxia-inducible factor 1-α (hif1-α) in an ovine model of acute myocardial infarction. J Am Heart Assoc. 2016 Jul 6;5(7). pii: e003714. doi: 10.1161/JAHA.116.003714
  22. Li H, Liu D, Li C, Zhou S, Tian D, Xiao D, Zhang H, Gao F, Huang J. Exosomes secreted from mutant-HIF-1α-modified bone-marrow-derived mesenchymal stem cells attenuate early steroid-induced avascular necrosis of femoral head in rabbit. Cell Biol Int. 2017 Dec;41(12):1379-90. doi: 10.1002/cbin.10869
Адрес для корреспонденции:
630090, Российская Федерация,
г. Новосибирск,
пр. акад. Лаврентьева, д. 8,
Институт химической биологии
и фундаментальной медицины СО РАН,
Центр новых медицинских технологий,
тел.: 8-913-753-0767,
e-mail: imai@mail.ru,
Майбородин Игорь Валентинович
Cведения об авторах:
Майбородин Игорь Валентинович, д.м.н., профессор, главный научный сотрудник лаборатории стволовой клетки, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-8182-5084
Шевела Андрей Иванович, д.м.н., профессор, заведующий отделом «Центр новых медицинских технологий», Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-3164-9377
Морозов Виталий Валерьевич, заведующий лабораторией инвазивных медицинских технологий, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0002-9810-5593
Михеева Татьяна Владимировна, к.м.н., докторант лаборатории стволовой клетки, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-2249-5174
Фигуренко Николай Федорович, к.м.н., докторант лаборатории стволовой клетки, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-0430-8673
Маслов Роман Владимирович, к.м.н., докторант лаборатории стволовой клетки, Институт химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-4472-859X
Майбородина Виталина Игоревна, д.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории ультраструктурных основ патологии, Институт молекулярной патологии и патоморфологии Федерального исследовательского центра фундаментальной и трансляционной медицины, г. Новосибирск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-5169-6373

В.С. КОЗОПАС

ЛЕЧЕHИЕ МHОГООСКОЛОЧHЫХ ДИАФИЗАРHЫХ ПЕРЕЛОМОВ КОСТЕЙ МЕТОДОМ БЛОКИРУЮЩЕГО ИHТРАМЕДУЛЛЯРHОГО ОСТЕОСИHТЕЗА (АHАЛИЗ ОШИБОК И ОСЛОЖHЕHИЙ)

Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина

Возрастание уровня травматизма и распространенности ортопедической патологии определяет необходимость совершенствования диагностики и лечения повреждений и заболеваний опорно-двигательного аппарата как приоритетного направления развития здравоохранения. Улучшение диагностических возможностей современных методов визуализации состояния костей, суставов и мягких тканей, расширение сферы применения высокотехнологичных малоинвазивных способов остеосинтеза позволят изменить концепцию предоставления ортопедо-травматологической помощи.
Приведенный обзор литературы посвящен актуальности проблемы и анализу структуры травматических повреждений, а также принципиальным преимуществам их лечения методом внутрикостного остеосинтеза, который заключается в том, что, благодаря закрытой репозиции отломков и малому хирургическому доступу вне зоны повреждения, не наносится дополнительная травма тканям в зоне перелома.
Изучены и проанализированы основные ошибки хирургов при выполнении интрамедуллярного блокирующего остеосинтеза. Показано, что лечение пациентов с диафизарными оскольчатыми переломами длинных трубчатых костей должно включать меры по восстановлению анатомических структур травмированного сегмента и функции поврежденной конечности. Установление четких показаний и последовательное предоперационное планирование оперативного вмешательства с тщательным подбором параметров фиксирующих конструкций являются основными факторами, влияющими на качество фиксации отломков, и обеспечивают конечный результат.

Ключевые слова: травма, переломы костей, блокирующий интрамедуллярный остеосинтез, ошибки хирургов, осложнения
с. 204-211 оригинального издания
Список литературы
  1. Гайко ГВ, Деркач РВ. Аналіз причин і факторів, що зумовлюють смертність постраждалих із травмами опорно-рухового апарату, отриманими під час ДТП. Наука і Практика. 2014;(1):82-86. http://nbuv.gov.ua/UJRN/nauipr_2014_1_13
  2. Гур’єв СО, Сацик СП, Євдошенко ВП, Нацевич РО. Лікування переломів довгих кісток у постраждалих унаслідок дорожньо-транспортних пригод. Травма. 2015;16(3):94-97. http://www.mif-ua.com/archive/article/40906
  3. Lacombe J, Cairns BJ, Green J, Reeves GK, Beral V, Armstrong MEG. Million women study collaborators. the effects of age, adiposity, and physical activity on the risk of seven site-specific fractures in postmenopausal women. J Bone Miner Res. 2016 Aug;31(8):1559-68. doi: 10.1002/jbmr.2826
  4. Scholes S, Panesar S, Shelton NJ, Francis RM, Mirza S, Mindell JS, Donaldson LJ. Epidemiology of lifetime fracture prevalence in England: a population study of adults aged 55 years and over. Age and Ageing. 2014;43(2):234-40. doi: 10.1093/ageing/aft167
  5. Заруцький ЯЛ, Трутяк ІР, Лакша АМ. Хірургічна тактика при пошкодженнях опорнорухового апарату у постраждалих із полі травмою. Літопис Травматології та Ортопедії. 2011;(1-2):98-101. http://nbuv.gov.ua/UJRN/Lto_2011_1-2_24
  6. Global Burden of Disease [Electronic resource]. WHO. [cited 2018 Dec 29]. Available from: http://www.who.int/healthinfo/global_burden_disease/en/
  7. Григор’єва НВ, Зубач ОБ. Фактори ризику переломів проксимального відділу стегнової кістки у хворих старших вікових груп. Травма. 2016;17(6):53-61. doi: 10.22141/1608-1706.6.17.2016.88618
  8. Корж НА, Герасименко СИ, Климовицкий ВГ, Лоскутов АЕ, Романенко КК, Герасименко АС, Коломиец ЕН. Распространенность переломов костей и результаты их лечения в Украине (клинико-эпидемиологическое исследование). Ортопедия, Травматология и Протезирование. 2010;(3):5-14. https://cyberleninka.ru/article/n/rasprostranennost-perelomov-kostey-i-rezultaty
  9. Hettrich CM, Browner B. High-energy trauma. Best Pract Res Clin Rheumatol. 2012 Apr;26(2):281-88. doi: 10.1016/j.berh.2012.03.007
  10. Борзых АВ, Климовицкий ВГ, Оприщенко АА, Борзых НА, Басий РВ. Эпидемиология полиструктурной травмы конечностей в регионе Донбасса. Травма. 2013;14(6):61-63. http://www.mif-ua.com/archive/article/37720
  11. Benirschke SK, Мelder I, Henley MB, Routt ML, Smith DG, Chapman JR, Swiontkowski MF. Closed interlocking nailing of femoral shaft fractures: assessment of technical complіcations and functional outcomes by comparison of a prospective database with retrospective review. J Ortop Trauma. 1993;7(2):118-22. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8459295
  12. Chan R, Taylor BC, Gentile J. Optimal Management of High-Energy Pilon Fractures. Orthopedics. 2015 Aug;38(8):e708-14. doi: 10.3928/01477447-20150804-59
  13. Ditillo M, Pandit V, Rhee P, Aziz H, Hadeed S, Bhattacharya B, Friese RS, Davis K, Joseph B. Morbid obesity predisposes trauma patients to worse outcomes: a National Trauma Data Bank analysis. J Trauma Acute Care Surg. 2014 Jan;76(1):176-79. doi: 10.1097/TA.0b013e3182ab0d7c
  14. Корж МО, Танькут ВО. Медичні аспекти дорожньо-транспортної полі травми, як основної причини смертності молодих людей в Україні [Electronic resource]. [cited 2018 Dec 29]. Avialable from: http://eprints.kname.edu.ua/29868/1/4.pdf
  15. Корж МО, Яременко ДО, Горідова ЛД, Романенко КК. Помилки та ускладнення в ортопедо-травматологічній практиці. Ортопедия, Травматология и Протезирование. 2010;(2):5-10.
  16. Заруцький ЯЛ, Косевцов ВО, Ткаченко АЄ. Травматизм у системі загроз національної безпеці України. Наука і Практика. 2014;(1):50-56. http://opb.org.ua/3053/1
  17. Vallier HA, Wang X, Moore TA, Wilber JH, Como JJ. Timing of orthopaedic surgery in multiple trauma patients: development of a protocol for early appropriate care. J Orthop Trauma. 2013 Oct;27(10):543-51. doi: 10.1097/BOT.0b013e31829efda1
  18. Фаддеев ДИ. Осложнения при лечении множественных и сочетанных переломов длинных трубчастых костей методами раннего стабильного погружного и чрескостного остеосинтеза. Вестн Травматологии и Ортопедии. 2013;(1):18-23.
  19. Brodauf L, Heßing K, Hoffmann R, Friemert B. Current state of medical care of polytrauma and mass casualty іncidents in Germany: are we well-prepared? Unfallchirurg. 2015 Sep 1;118(10):890-900. doi: 10.1007/s00113-015-0063-2
  20. Гурьев СЕ, Цвях АИ. Скелетная травма в структуре политравмы. Травма. 2014;15(5):7-10. http://www.mif-ua.com/archive/article/39982
  21. Malisano LP, Stevens D, Hunter GA. The management of long bone fractures in the head-injured polytrauma patient. J Orthop Trauma. 1994;8(1):1-5. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8169687
  22. Шимон ВМ, Шерегій АА, Гелета ММ, Болдижар ММ. Погляди на лікування переломів кісток гомілки методом черезкісткового остеосинтезу в умовах ендемічних регіонів. Літопис Травматології та Ортопедії. 2011;(21-22):180-82. http://nbuv.gov.ua/UJRN/Lto_2011_1-2_46
  23. Шимон ВМ, Шерегій АА. Перспективні напрямки лікування діафізарних переломів кісток гомілки. Травма. 2010;11(4):363-66. http://www.mif-ua.com/archive/article/20004
  24. Бруско АТ, Гайко ГВ. Сучасні уявлення про стадії реперативної регенерації кісткової тканини при переломах. Вісник Ортопедії, Травматології. 2014;(2):5-8. http://www.irbis-nbuv.gov.ua/cgi-bin/irbis_nbuv/cgiirbis_64.exe?C21COM=2&I21DBN=UJRN&P21DBN=UJRN&IMAGE_FILE_DOWNLOAD=1&Image_file_name=PDF/Votip_2014_2_3.pdf
  25. Климовицкий ВГ, Черныш ВЮ. Частота замедленной консолидации переломов у пострадавших разных возрастных групп и влияние на нее остеотропной терапии. Травма. 2011;12(3):129-35. http://www.mif-ua.com/archive/article/23297
  26. Anuar-Ramdhan IM, Azahari IM, Med M. Minimally Invasive Plate Osteosynthesis with Conventional Compression Plate for Diaphyseal Tibia Fracture. Malays Orthop J. 2014;8(3):33-36. doi: 10.5704/MOJ.1411.008
  27. Maru N, Mandaliya D, Parmar R. Two stage reconstruction protocol in management of high-energy proximal tibia fractures (Schatzker, type IV-VI). J Evol Med Dent Sci. 2012;1(4):639-45. doi: 10.14260/jemds/100
  28. Butcher NE, Enninghorst N, Sisak K, Balogh ZJ. Definition of polytrauma: variable interrater versus intrarater agreement – a prospective international study among trauma surgeons. J Trauma Acute Care Surg. 2013;74(3):884-89. doi: 10.1097/TA.0b013e31827e1bad.
  29. Champion HR, Copes WS, Sacco WJ, Lawnick MM, Bain LW, Gann DS, Gennarelli T, Mackenzie E, Schwaitzberg S. A new characterization of injury severity. J Trauma. 1990 May;30(5):539-45.
  30. Hoegel FW, Hoffmann S, Weninger P, Bühren V, Augat P. Biomechanical comparison of locked plate osteosynthesis, reamed and unreamed nailing in conventional interlocking technique, and unreamed angle stable nailing in distal tibia fractures. J Trauma Acute Care Surg. 2012 Oct;73(4):933-38. doi: 10.1097/TA.0b013e318251683f
  31. Калашніков АВ, Ставінський ЮО. Алгоритм лікування розладів репаративного остеосинтезу після діафізарних переломів стегнової та великогомілкової кісток за допомогою блокуючого інтрамедулярного остеосинтезу. Травма. 2011;12(1):69-66. http://www.mif-ua.com/archive/article/17224
  32. Henderson CE, Lujan TJ, Kuhl LL, Bottlang M, Fitzpatrick DC, Marsh JL. 2010 mid-America Orthopaedic Association Physician in Training Award: healing complications are common after locked plating for distal femur fractures. Clin Orthop Relat Res. 2011 Jun;469(6):1757-65. doi: 10.1007/s11999-011-1870-6
  33. Панков ИО, Сафаров РР, Сиразитдинов СД. Современные методы хирургического лечения пациентов с множественными переломами костей конечностей. Соврем Проблемы Науки и Образования. 2015;(5):243. https://www.science-education.ru/ru/article/view?id=22352
  34. Paller DJ, Frenzen SW, Bartlett CS 3rd, Beardsley CL, Beynnon BD. A three-dimensional comparison of intramedullary nail constructs for osteopenic supracondylar femur fractures. J Orthop Trauma. 2013 Feb;27(2):93-99. doi: 10.1097/BOT.0b013e31825199c9
  35. Lee YK, Chung CY, Park MS, Lee KM, Koo KH. Intramedullary nail versus extramedullary plate fixation for unstable intertrochanteric fractures: decision analysis. Arch Orthop Trauma Surg. 2013 Jul;133(7):961-68. doi: 10.1007/s00402-013-1764-z
  36. Kreb DL, Blokhuis TJ, van Wessem KJ, Bemelman M, Lansink KW, Leenen LP. Intramedullary nailing without interlocking screws for femoral and tibial shaft fractures. Arch Orthop Trauma Surg. 2013 Aug;133(8):1109-13. doi: 10.1007/s00402-013-1775-9
  37. Соколов ВА, Бондаренко АВ, Бялик ЕИ, Файн АМ, Иванов ПА. Сравнительная оценка методов остеосинтеза при полисегментарных переломах нижних конечностей. Вестн Травматологии и Ортопедии им НН Приорова. 2006;(4):3-8.
  38. Дергачев ВВ, Александров АН, Ванхальский СБ, Онацкий ЮВ, Котенко РС, Колесников АМ. Интрамедуллярный блокирующий остеосинтез – современная методика, новые сложности, осложнения. Травма. 2011;12(4):20-23. https://cyberleninka.ru/article/n/intramedullyarnyy-blokiruyuschiy-osteosintez-sovremennaya-metodika-novye-slozhnosti-oslozhneniya
  39. Березка МI, Литовченко ВО, Гарячий ВО, Аль Масрі РАФ. Хірургічна технологія закритого інтрамедулярного блокуючого остеосинтезу при лікуванні постраждалих з багатоуламковими переломами кісток кінцівок. Проблеми Екології та Медицини. 2011;15(5-6):3-8. https://cyberleninka.ru/article/n/hirurgichna-tehnologiya-zakritogo-intramedulyarnogo-blokuyuchogo-osteosintezu-pri-likuvanni-postrazhdalih-z-bagatoulamkovimi
  40. Півень ЮМ, Литвин ЮП. Передопераційне планування та вибір методу остеосинтезу при багатофрагментарних переломах проксимального відділу плечової кістки. Проблеми Травматології та Остеосинтезу. 2015;(1):75-76. http://nbuv.gov.ua/UJRN/pto_2015_1_38
  41. Литовченко ВО, Власенко ДВ, Власенко ВГ, Гарячий ЕВ, Галабутська ТМ, Фадеїв ОГ. Інрамедулярний остеосинтез блокованими цвяхами в лікуванні переломів стегнової кістки в різних анатомо-функціональних утвореннях при одночасному пошкодженні. Травма. 2011;12(4):63-66. http://www.mif-ua.com/archive/article/25610
  42. Челноков АН, Бекреев ДА. Интрамедуллярный остеосинтез при переломах верхней трети большеберцовой кости – техника на основе чрезкостного остеосинтеза. Гений Ортопедии. 2011;(2):112-16. https://cyberleninka.ru/article/n/intramedullyarnyy-osteosintez-pri-perelomah-verhney-treti-bolshebertsovoy-kosti-tehnika-na-osnove-chreskostnogo-osteosinteza
  43. Литовченко ВА, Березка НИ, Гарячий ЕВ, АФ Аль Масри Рами, Власенко ДВ. Ошибки при лечении многооскольчатых переломов костей конечностей с применением интрамедуллярного блокирующего остеосинтеза. Експериментальна і Клінічна Медицина. 2012; 4(57):132-135. http://nbuv.gov.ua/UJRN/eikm_2012_4_31
  44. Литовченко ВО, Гарячий ЄВ, Березка МІ, Спесивий ІІ. Інтрамедулярний блокуючий остеосинтез: помилки, яких не повинно бути. Медицина Сьогодні і Завтра. 2012;(1):113-19. https://msz.knmu.edu.ua/?journal=pub&page=article&op=viewFile&path%5B%5D=223&path%5B%5D=209
  45. Литовченко ВО, Гарячий ЄВ, Березка МІ, Спесивий ІІ. Найпоширеніші помилки при використані інтрамедулярного блокуючого остеосинтезу. Травма. 2012;13(4):145-48. http://www.mif-ua.com/archive/article/34672
  46. Климовицкий ВГ, Черныш ВЮ, Климовицкий ФВ. Наружный чрескостный остеосинтез при лечении внесуставных переломов костей голени: показания, осложнения, результаты применения. Травма. 2016;17(2):26-30. http://www.mif-ua.com/archive/article/42580
  47. Русин ВІ, Попович ЯМ, Корсак ВВ, Болдіжар ПО. Радіоізотопна діагностика глибоких венозних тромбозів. Науковий вісник Ужгородського університету. Сер Медицина. 2013;1(46):114-17. http://nbuv.gov.ua/UJRN/UNUMED_2013_1_26
Адрес для корреспонденции:
79010, Украина, г. Львов,
ул. Пекарская, д. 69,
Львовский национальный медицинский
университет имени Данила Галицкого,
кафедра медицины катастроф
и военной медицины,
тел. +38 (032) 260-08-28,
e-mail: kozopas@ukr.net,
Козопас Виктор Степанович
Cведения об авторах:
Козопас Виктор Степанович, к.м.н., ассистент кафедры медицины катастроф и военной медицины, Львовский национальный медицинский университет имени Данила Галицкого, г. Львов, Украина.
https://orcid.org/0000-0003-3451-6016

С.А. СУШКОВ, Е.И. ЛЕБЕДЕВА, О.Д. МЯДЕЛЕЦ

ПЕРИЦИТЫ КАК ПОТЕHЦИАЛЬHЫЙ ИСТОЧHИК HЕОАHГИОГЕHЕЗА

Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск,
Республика Беларусь

Анализ научной литературы показал, что исследователи в области регенеративной медицины считают перициты перспективной терапевтической мишенью. Однако существует еще слишком много проблем, требующих тщательного изучения. Одна из основных задач – идентификация перицитов. Несмотря на многочисленные попытки панель молекулярных маркеров остается неразработанной. Все используемые для идентификации перицитов маркеры по своей экспрессии являются динамичными. Возможно, это связано с этапами дифференцировки перицитов, особенностью строения ткани, патологическим состоянием, иерархией сосудов и стадией их развития. Актуальной проблемой остается установление источника развития перицитов и понимание процессов, которые управляют их дифференцировкой. Механизм дифференцировки перицитов в миофибробласты, остеобласты, адипоциты, хондроциты, гладкие миоциты и макрофаги остается недостаточно изученным и дискуссионным. Нет единого мнения по поводу гетерогенности перицитов. Это является предметом дальнейших исследований, направленных на доказательство неоднородности перицитов с точки зрения морфологии и функции вдоль сосудистого русла, количественное определение различий в экспрессии маркеров у разных подтипов перицитов и разработку номенклатуры. Особый интерес представляет определение фенотипических различий между перицитами при ангиогенезе и зрелых сосудов. Это необходимо для понимания функций перицитов в микроциркуляторном русле. Важным направлением является детальное изучение сигнальных путей, участвующих в регуляции сложных взаимодействий между перицитами и эндотелиоцитами. Это позволит не только расширить представления о патогенезе, но и внедрить в практическую медицину новые методы лечения.

Ключевые слова: перициты, морфология, происхождение, маркеры, сигнальные пути, роль в патологических процессах
с. 212-221 оригинального издания
Список литературы
  1. Armulik A, Genovе G, Betsholtz C. Pericytes: developmental, physiological, and pathological perspectives, problems, and promises. Dev. Cell 2011 Aug;21(2):193-15. doi: 10.1016/j.devcel.2011.07.001
  2. Berthiaume AA, Hartmann DA, Majesky MW, Bhat NR, Shih AY. Pericyte structural remodeling in cerebrovascular health and homeostasis. Front Aging Neurosci. 2018 Jul;10:210. doi: 10.3389/fnagi.2018.00210
  3. Hartmann DA, Underly RG, Grant RI, Watson AN, Lindner V, Shih AY. Pericyte structure and distribution in the cerebral cortex revealed by high-resolution imaging of transgenic mice. Neurophotonics. 2015 Oct;2(4):041402. doi: 10.1117/1.NPh.2.4.041402
  4. Klein D. The tumor vascular endothelium as decision maker in cancer therapy. Front Oncol. 2018 Sep;8:367. doi: 10.3389/fonc.2018.00367
  5. Harrell CR, Simovic Markovic B, Fellabaum C, Arsenijevic A, Djonov V, Volarevic V. Molecular mechanisms underlying therapeutic potential of pericytes. J Biomed Sci. 2018 Mar 9;25(1):21. doi: 10.1186/s12929-018-0423-7
  6. Thomas HM, Cowin AJ, Mills1 SJ. The importance of pericytes in healing: wounds and other pathologies. Int J Mol Sci. 2017 Jun;18(6):1129. Published online 2017 May 24. doi: 10.3390/ijms18061129
  7. Feng J, Mantesso A, De Bari C, Nishiyama A, Sharpe PT. Dual origin of mesenchymal stem cells contributing to organ growth and repair. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 Apr 19;108(16):6503-8. doi: 10.1073/pnas.1015449108
  8. Orekhov AN, Bobryshev YV, Chistiakov DA. The complexity of cell composition of the intima of large arteries: focus on pericyte-like cells. Cardiovasc Res. 2014 Sep 1;103(4):438-51. doi: 10.1093/cvr/cvu168
  9. Mao Y, Liu X, Song Y, Zhai C, Zhang L. VEGF-A/VEGFR-2 and FGF-2/FGFR-1 but not PDGF-BB/PDGFR-β play important roles in promoting immature and inflammatory intraplaque angiogenesis. PLoS One. 2018 Aug 20;13(8):e0201395. doi: 10.1371/journal.pone.0201395
  10. Schrimpf C, Koppen T, Duffield JS, Bоer U, David S, Ziegler W, Haverich A, Teebken OE, Wilhelmi M. TIMP3 is regulated by pericytes upon shear stress detection leading to modified endothelial cell response. Eur J Vasc Endovasc Surg. 2017 Oct;54(4):524-33. doi: 10.1016/j.ejvs.2017.07.002
  11. Murray IR, Baily JE, Chen WCW, Dar A, Gonzalez ZN, Jensen AR, Petrigliano FA, Deb A, Henderson NC.. Skeletal and cardiac muscle pericytes: functions and therapeutic potential. Pharmacol Ther. 2017 Mar;171:65-74. doi: 10.1016/j.pharmthera.2016.09.005
  12. Kumar A, D’Souza SS, Moskvin OV, Toh H, Wang B, Zhang J, Swanson S, Guo LW, Thomson JA, Slukvin II. Specification and diversification of pericytes and smooth muscle cells from mesenchymoangioblasts. Cell Rep. 2017 May 30;19(9):1902-16. doi: 10.1016/j
  13. Chen Q, Zhang H, Liu Y, Adams S, Eilken H, Stehling M, Corada M, Dejana E, Zhou B, Adams RH. Endothelial cells are progenitors of cardiac pericytes and vascular smoothmuscle cells. Nat Commun. 2016 Aug 12;7:12422. doi: 10.1038/ncomms12422
  14. Díaz-Flores L, Gutiеrrez R, Madrid JF, Varela H, Valladares F, Acosta E, Martín-Vasallo P, Díaz-Flores LJr. Pericytes. Morphofunction, interactions and pathology in a quiescent and activated mesenchymal cell niche. Histol Histopathol. 2009 Jul;24(7):909-69. doi: 10.14670/HH-24.909
  15. Navarro P, Ruco L, Dejana E. Differential localization of VE- and N-cadherins in human endothelial cells: VE-cadherin competes with N-cadherin for junctional localization. J Cell Biol. 1998 Mar 23;140(6):1475-84. doi: 10.1083/jcb.140.6.1475
  16. Ivanova EA, Orekhov AN. Cellular model of atherogenesis based on pluripotent vascular wall pericytes. Stem Cells Int. 2016;2016:7321404. doi: 10.1155/2016/7321404
  17. Crislip GR, O’Connor PM, Wei Q, Sullivan JC. Vasa recta pericyte density is negatively associated with vascular congestion in the renal medulla following ischemia reperfusion in rats. Am J Physiol Renal Physiol. 2017 Nov 1;313(5): F1097-F1105. doi: 10.1152/ajprenal.00261.2017
  18. Tedesco FS, Dellavalle A, Diaz-Manera J, Messina G, Cossu G. Repairing skeletal muscle: regenerative potential of skeletal muscle stem cells. J Clin Invest. 2010 Jan;120(1):11-19. doi: 10.1172/JCI40373
  19. Goodall EF, Wang C, Simpson JE, Baker DJ, Drew DR, Heath PR, Saffrey MJ, Romero IA, Wharton SB. Age-associated changes in the blood-brain barrier: comparative studies in human and mouse. Neuropathol Appl Neurobiol. 2018 Apr;44(3):328-40. doi: 10.1111/nan.12408
  20. Chung YR, Choi JA, Koh JY, Yoon YH. Ursodeoxycholic acid attenuates endoplasmic reticulum stress-related retinal pericyte loss in streptozotocin-induced diabetic mice. J Diabetes Res. 2017;2017:1763292. doi: 10.1155/2017/1763292
  21. Yamazaki T, Mukouyama YS. Tissue specific origin, development, and pathological perspectives of pericytes. Front Cardiovasc Med. 2018 Jun 27;5:78. doi: 10.3389/fcvm.2018.00078
  22. Birbrair A, Borges IDT, Gilson Sena IF, Almeida GG, da Silva Meirelles L, GonÇalves R, Mintz A, Delbono O. How Plastic Are pericytes? Stem Cells Dev. 2017 Jul 15;26(14):1013-19. doi: 10.1089/scd.2017.0044
  23. Attwell D, Mishra A, Hall CN, O’Farrell FM, Dalkara T. What is a pericyte? J Cereb Blood Flow Metab. 2016 Feb;36(2):451-55. doi: 10.1177/0271678X15610340
  24. Esteves CL, Donadeu FX. Pericytes and their potential in regenerative medicine across species. Cytometry A. 2018 Jan;93(1):50-59. doi: 10.1002/cyto.a.23243
  25. Tian X, Brookes O, Battaglia G. Pericytes from mesenchymal stem cells as a model for the blood-brain barrier. Sci Rep. 2017 Jan;7:39676. doi: 10.1038/srep39676
  26. Ramjiawan RR, Griffioen AW, Duda DG. Anti-angiogenesis for cancer revisited: Is there a role for combinations with immunotherapy? Angiogenesis. 2017 May;20(2):185-204. doi: 10.1007/s10456-017-9552-y
  27. Dias Moura Prazeres PH, Sena IFG, Borges IDT, de Azevedo PO, Andreotti JP, de Paiva AE, de Almeida VM, de Paula Guerra DA, Pinheiro Dos Santos GS, Mintz A, Delbono O, Birbrair A. Pericytes are heterogeneous in their origin within the same tissue. Dev Biol. 2017 Jul 1;427(1):6-11. doi: 10.1016/j.ydbio.2017.05.001
  28. Gautam J, Nirwane A, Yao Y. Laminin differentially regulates the stemness of type I and type II pericytes. Stem Cell Res Ther. 2017 Feb 7;8(1):28. doi: 10.1186/s13287-017-0479-4
  29. Birbrair A, Zhang T, Files DC, Mannava S, Smith T, Wang ZM, Messi ML, Mintz A, Delbono O. Type-1 pericytes accumulate after tissue injury and produce collagen in an organ-dependent manner. Stem Cell Res Ther. 2014 Nov 6;5(6):122. doi: 10.1186/scrt512
  30. Krishna Priya S, Nagare RP, Sneha VS, Sidhanth C, Bindhya S, Manasa P, Ganesan TS. Tumour angiogenesis-origin of blood vessels. Int J Cancer. 2016 Aug 15;139(4):729-35. doi: 10.1002/ijc.30067
  31. Harrell CR, Simovic Markovic B, Fellabaum C, Arsenijevic A, Djonov V, Volarevic V. Molecular mechanisms underlying therapeutic potential of pericytes. J Biomed Sci. 2018 Mar 9;25(1):21. doi: 10.1186/s12929-018-0423-7
  32. Onogi Y, Wada T, Kamiya C, Inata K, Matsuzawa T, Inaba Y, Kimura K, Inoue H, Yamamoto S, Ishii Y, Koya D, Tsuneki H, Sasahara M, Sasaoka T. PDGFRβ Regulates Adipose Tissue expansion and glucose metabolism via vascular remodeling in diet-induced obesity. Diabetes. 2017 Apr;66(4):1008-21. doi: 10.2337/db16-0881
  33. Park DY, Lee J, Kim J, Kim K, Hong S, Han S, Kubota Y, Augustin HG, Ding L, Kim JW, Kim H, He Y, Adams RH, Koh GY. Plastic roles of pericytes in the blood-retinal barrier. Nat Commun. 2017 May 16;8:15296. doi: 10.1038/ncomms15296
  34. Kuzmanov A, Hopfer U, Marti P, Meyer-Schaller N, Yilmaz M, Christofori G. LIM-homeobox gene 2 promotes tumor growth and metastasis by inducing autocrine and paracrine PDGF-B signaling. Mol Oncol. 2014 Mar;8(2):401-16. doi: 10.1016/j.molonc.2013.12.009
  35. Kobayashi H, DeBusk LM, Babichev YO, Dumont DJ, Lin PC. Hepatocyte growth factor mediates angiopoietin-induced smooth muscle cell recruitment. Blood. 2006 Aug 15;108(4):1260-66. doi: 10.1182/blood-2005-09-012807
  36. He C, Lv X, Hua G, Lele SM, Remmenga S, Dong J, Davis JS, Wang C. YAP forms autocrine loops with the ERBB pathway to regulate ovarian cancer initiation and progression. Oncogene. 2015 Dec 10;34(50):6040-54. doi: 10.1038/onc.2015.52
  37. Miyagawa S, Katsu Y, Watanabe H, Iguchi T. Estrogen-independent activation of erbBs signaling and estrogen receptor alpha in the mouse vagina exposed neonatally to diethylstilbestrol. Oncogene. 2004 Jan 15;23(2):340-49. doi: 10.1038/sj.onc.1207207
  38. Qin G, Chen Y, Li H, Xu S, Li Y, Sun J, Rao W, Chen C, Du M, He K, Ye Y. Melittin inhibits tumor angiogenesis modulated by endothelial progenitor cells associated with the SDF-1α/CXCR4 signaling pathway in a UMR-106 osteosarcoma xenograft mouse model. Mol Med Rep. 2016 Jul;14(1):57-68. doi: 10.3892/mmr.2016.5215
  39. Lee J, Marrero L, Yu L, Dawson LA, Muneoka K, Han M. SDF-1α/CXCR4 signaling mediates digit tip regeneration promoted by BMP-2. Dev Biol. 2013 Oct 1;382(1):98-109. doi: 10.1016/j.ydbio.2013.07.020
  40. Tang F, Guo S, Liao H, Yu P, Wang L, Song X, Chen J, Yang Q. Resveratrol enhances neurite outgrowth and synaptogenesis via sonic hedgehog signaling following oxygen-glucose deprivation/reoxygenation injury. Send to Cell Physiol Biochem. 2017;43(2):852-69. doi: 10.1159/000481611
  41. Yamazaki T, Nalbandian A, Uchida Y, Li W, Arnold TD, Kubota Y, Yamamoto S, Ema M, Mukouyama YS. Tissue myeloid progenitors differentiate into pericytes through TGF-β signaling in developing skin vasculature. Cell Rep. 2017 Mar 21;18(12):2991-04. doi: 10.1016/j
  42. Sweeney MD, Ayyadurai S, Zlokovic BV. Pericytes of the neurovascular unit: key functions and signaling pathways. Nat Neurosci. 2016 May 26;19(6):771-83. doi: 10.1038/nn.4288
  43. Lipphardt M, Song JW, Matsumoto K, Dadafarin S, Dihazi H, Müller G, Goligorsky MS. The third path of tubulointerstitial fibrosis: aberrant endothelial secretome. Kidney Int. 2017 Sep;92(3):558-68. doi: 10.1016/j.kint.2017.02.033
  44. Leaf IA, Nakagawa S, Johnson BG, Cha JJ, Mittelsteadt K, Guckian KM, Gomez IG, Altemeier WA, Duffield JS. Pericyte MyD88 and IRAK4 control inflammatory and fibrotic responses to tissue injury. J Clin Invest. 2017 Jan 3;127(1):321-34. doi: 10.1172/JCI87532
  45. Jackson S, ElAli A, Virgintino D, Gilbert MR. Blood-brain barrier pericyte importance in malignant gliomas: what we can learn from stroke and Alzheimer’s disease. Neuro Oncol. 2017 Sep 1;19(9):1173-82. doi: 10.1093/neuonc/nox058
  46. Schiffer D, Annovazzi L, Casalone C, Corona C, Mellai M. Glioblastoma: microenvironment and niche concept. Cancers (Basel). 2018 Dec 20;11(1). pii: E5. doi: 10.3390/cancers11010005
  47. Kusuhara S, Fukushima Y, Ogura S, Inoue N, Uemura A. Pathophysiology of diabetic retinopathy: the old and the new. Diabetes Metab J. 2018 Oct;42(5):364-76. doi: 10.4093/dmj.2018.0182
  48. Wang Y, Xu J, Chang L, Meyers CA, Zhang L, Broderick K, Lee M, Peault B, James AW. Relative contributions of adipose-resident CD146+ pericytes and CD34+ adventitial progenitor cells in bone tissue engineering. NPJ Regen Med. 2019 Jan 7;4:1. doi: 10.1038/s41536-018-0063-2
  49. Panina YA, Yakimov AS, Komleva YK, Morgun AV, Lopatina OL, Malinovskaya NA, Shuvaev AN, Salmin VV, Taranushenko TE, Salmina AB. Plasticity of adipose tissue-derived stem cells and regulation of angiogenesis. Front Physiol. 2018 Nov 26;9:1656. doi: 10.3389/fphys.2018.01656
  50. Lerman DA, Diaz M, Peault B. Changes in coexpression of pericytes and endogenous cardiac progenitor cells from heart development to disease state. Eur Heart J. 2018 Aug 28;39(Suppl 1). pii: P1850. doi: 10.1093/eurheartj/ehy565.P1850
Адрес для корреспонденции:
210009, Республика Беларусь,
г. Витебск, пр. Фрунзе, д. 27,
Витебский государственный
медицинский университет,
кафедра гистологии, цитологии и эмбриологии,
тел. моб.: + 375 33 675 76 99,
e-mail: lebedeva.ya-elenale2013@yandex.ru,
Лебедева Елена Ивановна
Cведения об авторах:
Сушков Сергей Альбертович, к.м.н, доцент, проректор по НИР, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
http://orcid.org/0000-0002-7524-6182
Лебедева Елена Ивановна, к.б.н., доцент кафедры гистологии, цитологии и эмбриологии, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0003-1309-4248
Мяделец Олег Данилович, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой гистологии, цитологии и эмбриологии, Витебский государственный медицинский университет, Витебский государственный медицинский университет, г. Витебск, Республика Беларусь.
https://orcid.org/0000-0002-6781-5584

СЛУЧАИ ИЗ ПРАКТИКИ

А.В. МИХЕЕВ, С.Н. ТРУШИH

АHЕВРИЗМАЛЬHАЯ КОСТHАЯ КИСТА РЕБРА

Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань,
Российская Федерация

Аневризмальная костная киста представляет собой редко встречающееся доброкачественное опухолеподобное заболевание с преимущественным поражением метафизов длинных трубчатых костей. Наиболее часто это доброкачественное неопластическое поражение костей возникает и диагностируется в детском либо подростковом возрасте с незначительным преобладанием лиц женского пола. Специфических клинических проявлений аневризмальная костная киста не имеет, ее развитие сопровождается болевым синдромом, припухлостью мягких тканей, ограничением функции конечностей, реже патологическими переломами. Аневризмальная костная киста как первичная доброкачественная опухоль ребра наблюдается крайне редко, особенно у лиц пожилого возраста. В статье представлено клиническое наблюдение пожилого мужчины, 69 лет, с аневризмальной костной кистой второго ребра слева. Поводом для обращения за медицинской помощью послужила нарастающая боль в грудной клетке на стороне поражения. Рентгеновская компьютерная томография позволила определить точную локализацию новообразования, взаимосвязь с ребрами и структурами средостения. Киста удалена радикально посредством торакотомии слева, резекции новообразования с кортикальным слоем ребра. Последующее морфологическое исследование подтвердило диагноз аневризмальной костной кисты. Пациент наблюдался в течение 6 месяцев, признаки рецидива заболевания не выявлены.

Ключевые слова: солитарная костная киста, аневризмальная костная киста, ребро, доброкачественные новообразования ребер, резекция ребра
с. 222-226 оригинального издания
Список литературы
  1. Cappana R, Albisinni U, Picci P, Calderoni P, Campanacci M and Spingfield S. Aneurysmal bone cyst of the spine. J Bone Joint Surg Am. 1985;67(4):527-31. doi: 10.2106/00004623-198567040-00004
  2. Guo J, Liang C. A giant aneurysmal bone cyst of the rib: Case report. Oncol Lett. 2014 Jan;7(1):267-29. doi: 10.3892/ol.2013.1642
  3. Jaffe HL, Lichtenstein L. Solitary unicameral bone cyst with emphasis on the roentgen picture, the pathologic appearance and the pathogenesis. Arch Surg. 1942;44(6):1004-25. doi: 10.1001/archsurg.1942.01210240043003
  4. Fletcher CDM, Bridge JA, Hogendoorn PCW, Mertens F. WHO Classification of Tumors of Soft Tissue and Bone. 4th ed. 2013;5. 468 р.
  5. Рогожин ДВ, Коновалов ДМ, Большаков НА, Талалаев АГ, Козлов АС, Кузин АС. Аневризмальная костная киста у детей и подростков. Вопр Гематологии/Онкологии и Иммунопатологии в Педиатрии. 2017;16(2):33-39. doi: 10.24287/1726-1708-2017-16-2-33-39
  6. Блудов АБ, Замогильная ЯА, Неред АС, Кочергина НВ. Аневризмальная костная киста. Саркомы Костей, Мягких Тканей и Опухоли Кожи. 2013;(4):3-9. https://elibrary.ru/item.asp?id=23252014&
  7. Oliveira AM, Perez-Atayde AR, Inwards CY, Medeiros F, Derr V, Hsi BL, Gebhardt MC, Rosenberg AE, Fletcher JA. USP6 and CDH11 oncogenes identify the neoplastic cell in primary aneurysmal bone cysts and are absent in so-called secondary aneurysmal bone cysts. Am J Pathol. 2004 Nov;165(5):1773-80. doi: 10.1016/S0002-9440(10)63432-3
  8. Соловьев АЕ, Ларичева ОВ. Результаты лечения костных кист и опухолей костей у детей. Рос Мед-Биол Вестн им акад ИП Павлова. 2017;25(2):264-69. doi: 10.23888/PAVLOVJ20172264-269
  9. Robinson AE, Thomas RL, Monson DM. Aneurysmal bone cyst of the rib. A report of two unusual cases. Am J Roentgenol Radium Ther Nucl Med. 1967 Jul;100(3):526-29. doi: 10.2214/ajr.100.3.526
  10. Sabanathan S, Chen K, Robertson CS, Salama FD. Aneurysmal bone cyst of rib. Thorax 1984 Feb;39(2):125-30. doi: 10.1136/thx.39.2.125
  11. Çalik M, Çalik SG, Aygün MS, Esme H. Aneurysmal bone cyst of rib: a report of a rare case. J Emerg Med Case Rep. 2016;7:49-50 doi: 10.5152/jemcr.2016.1508
Адрес для корреспонденции:
390026, Российская Федерация,
г. Рязань, ул. Высоковольтная, д. 9,
Рязанский государственный медицинский
университет им. акад. И.П. Павлова,
кафедра факультетской хирургии
с курсом анестезиологии и реаниматологии,
тел.: +7 910 902-18-36,
e-mail: almiheev77@mail.ru,
Михеев Алексей Владимирович
Cведения об авторах:
Трушин Сергей Николаевич, д.м.н., профессор, заведующий кафедрой факультетской хирургии с курсом анестезиологии и реаниматологии, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
https://orcid.org/0000-0003-0470-6345
Михеев Алексей Владимирович, к.м.н., доцент, доцент кафедры факультетской хирургии с курсом анестезиологии и реаниматологии, Рязанский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, г. Рязань, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0001-6936-1451

С.Н. ЛЕОHОВА, И.В. УСОЛЬЦЕВ

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕHИЕ ПЕРЕКРЕЩЕHHЫХ ПАЛЬЦЕВ СТОПЫ

Иркутский научный центр хирургии и травматологии, г. Иркутск,
Российская Федерация

В статье представлен клинический случай, демонстрирующий успешное оперативное лечение пациентки с сочетанием двух видов деформации пальцев стопы – вальгусного отклонения I пальца и варусно-молоткообразной деформации II пальца стопы (перекрещенные пальцы). При обследовании пациентки были оценены характер и тяжесть деформации пальцев стопы, по рентгенограммам проведены необходимые расчеты, выбраны оптимальные хирургические методики лечения. Применение авторского метода хирургического лечения позволило устранить деформацию I пальца стопы, использование некоторых приемов известной методики Helal способствовало исправлению деформации II пальца стопы. Данный клинический случай хирургического лечения перекрещенных пальцев представляет интерес тем, что показывает важность проведения предоперационного планирования, включающего выполнение точных предварительных расчетов и выявление необходимых для устранения деформации пальцев стопы параметров. Определение до операции по рентгенограмме стопы таких параметров, как длина необходимого укорочения и величина необходимого бокового смещения фрагмента плюсневой кости, позволяет во время операции выполнить точную разметку линий на фрагменте плюсневой кости и по ним осуществить пропилы для правильной коррекции деформации пальцев стопы, способствует восстановлению ее анатомического состояния и статодинамической функции без рецидивов в послеоперационном периоде.

Ключевые слова: вальгусное отклонение первого пальца стопы, молоткообразная деформация пальцев стопы, деформация стопы, пальцы стопы, перекрещенные паль
с. 227-231 оригинального издания
Список литературы
  1. Кондрашова ИА, Давлетова НА, Кондрашов АН. Клинико-рентгенологические аспекты диагностики hallux valgus и поперечного плоскостопия. Травма 2013;14(4):81-86. https://cyberleninka.ru/article/v/kliniko-rentgenologicheskie-aspekty-diagnostiki-hallux-valgus-i-poperechnogo-ploskostopiya
  2. Shi GG, Henning P, Marks RM. Correlation of postoperative position of the sesamoids after Chevron osteotomy with outcome. Foot Ankle Int. 2016;37(3):274-80. doi: 10.1177/1071100715624147
  3. Сорокин ЕП, Карданов АА, Ласунский СА, Безгодков ЮА, Гудз АИ. Хирургическое лечение вальгусного отклонения первого пальца стопы и его возможные осложнения (обзор литературы). Травматология и Ортопедия России. 2011;(4):123-30. doi: 10.21823/2311-2905-2011--4-123-130
  4. Карданов АА. Хирургическая коррекция деформаций стопы. Москва, РФ: Медпрактика-М; 2016. 220c. http://www.trauma-books.ru/product/hirurgicheskaya-korrektsiya-deformatsiy-stopy
  5. Trnka HJ, Mühlbauer M, Zettl R, Myerson MS, Ritschl P. Comparison of the results of the Weil and Helal osteotomies for the treatment of metatarsalgia secondary to dislocation of the lesser metatarsophalangeal joints. Foot Ankle Int. 1999 Feb;20(2):72-79. doi: 10.1177/107110079902000202
Адрес для корреспонденции:
664003, Российская Федерация,
г. Иркутск, ул. Борцов Революции, д. 1,
Иркутский научный центр хирургии
и травматологии,
научно-клинический отдел травматологии,
тел. +7 9641142814,
e-mail: ivu38@mail.ru,
Усольцев Иван Владимирович
Cведения об авторах:
Леонова Светлана Николаевна, д.м.н., ведущий научный сотрудник научно-клинического отдела травматологии, Иркутский научный центр хирургии и травматологии, г. Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0003-3675-6355
Усольцев Иван Владимирович, научный сотрудник научно-клинического отдела травматологии, Иркутский научный центр хирургии и травматологии,
г. Иркутск, Российская Федерация.
http://orcid.org/0000-0002-4175-8403

НАУЧHЫЕ СЪЕЗДЫ И КОHФЕРЕHЦИЯ

-

РЕЗОЛЮЦИЯ XVI СЪЕЗДА ХИРУРГОВ РЕСПУБЛИКИ БЕЛАРУСЬ (1-2 HОЯБРЯ 2018 Г., Г. ГРОДHО)

-

с. 232-239 оригинального издания
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023