2010 г. №6 Том 18

ЛЕКЦИИ, ОБЗОРЫ

Ю.С. ВИHHИК, О.В. ПЕРЬЯHОВА, Е.В. ОHЗУЛЬ, О.В. ТЕПЛЯКОВА

МИКРОБHЫЕ БИОПЛЁHКИ В ХИРУРГИИ: МЕХАHИЗМЫ ОБРАЗОВАHИЯ, ЛЕКАРСТВЕHHАЯ УСТОЙЧИВОСТЬ, ПУТИ РЕШЕHИЯ ПРОБЛЕМЫ

ГОУ ВПО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого»,
Российская Федерация

Научный обзор посвящён значению микробных биоплёнок в формировании очагов хирургической инфекции. Изложены механизмы образования биоплёнки, особенности структурной организации, формирования лекарственной резистентности. Приведены примеры участия микробных сообществ в кардиохирургической и урологической практике, а также в инициации катетер-ассоциированных инфекций. Рассмотрены проблемы и перспективы лекарственного и немедикаментозного воздействия на бактерии в составе биоплёнки.

Ключевые слова: биоплёнка, резистентность, адгезия, ультраструктура, образование микробных сообществ, биоциды
с. 115 – 125 оригинального издания
Список литературы
  1. Бухарин, О. В. Теоретические и прикладные аспекты проблемы персистенции микроорганизмов / О. В. Бухарин // Журн. микробиология. – 2000. – № 4. – С. 4-7.
  2. Бухарин, О. В. Фундаментальные и прикладные аспекты проблемы персистенции микроорганизмов / О. В. Бухарин, Б. Я. Усвяцов, Л. М. Хуснутдинова // Журн. микробиология. – 2003. – №4. – С. 3-8.
  3. Габриэлян, Р. И. Функции микрофлоры желудочно – кишечного тракта и последствия её нарушения после хирургических вмешательств / Р. И. Габриэлян, Е. М. Горская, Н. Д. Снегова // Антибиотики и химиотерапия. – 2000. – № 45 (9). – С. 24-29.
  4. Proteom analysis reveals differential protein expression by Batlus cereus during biofilm formation / M. C. Oosthuizen [et al.] // Appl. Environ Microbiol. – 2002. – Vol. 68. – P. 2770-2780.
  5. Изменение антибиотикочувствительности стафилококков в условиях реализации эффекта пептидного антибактериального фактора / В. П. Коробов [и др.] // Антибиотики и химиотерапия. – 2002. – № 47 (2). – С. 11-15.
  6. Мельников, В. Г. Поверхностные структуры грампозитивных бактерий в межклеточном взаимодействии и плёнкообразовании / В. Г. Мельников // Журн. микробиология. – 2010. – № 2. – С. 119-123.
  7. Сидоренко, С. В. Инфекционный процесс как «диалог» между хозяином и паразитом / С. В. Сидоренков // Клин. микробиология и антимикроб. химия. – 2001. – № 4. – С. 301-315.
  8. Литвин, В. Ю. Обратимый переход патогенных бактерий в покоящееся (некультивируемое) состояние: экологические и генетические механизмы / В.Ю. Литвин, А. Л. Гинцбург, В. И. Пушкарёва // Вестн. РАМН. – 2000. – № 1. – С. 7-13.
  9. Бухарин, О. В. Биология патогенных кокков / О. В. Бухарин, Б. Я. Усвяцов, О. Л. Чернова. – М.: Медицина, 2002. – 107 c.
  10. Изучение способности к образованию биопленок у штаммов Yersinia pestis основного и неосновного подвидов / Н. А. Видяева [и др.] // Журн. микробиология. – 2009. – №5. – С. 13-19.
  11. Формирование биоплёнок клиническими штаммами бактерий комплекса Burkholderia cepacia в зависимости от их фенотипических и генотипических характеристик / И. А. Шагинян [и др.] // Журн. микробиология. – 2007. – № 1. – С. 3-9.
  12. Dong, Y. Quenching quorum-sensing-dependent bacterial infection by an N-acyl-homoserine lactonase / Y. Dong, L. Wang, J. Xu // Nature. – 2001. – Vol. 411. – P. 411; P. 813-817.
  13. Haugo, A. J. Vibrio cholerae Cyt R is a repressor of biofilm development / A. J. Haugo, P. I. Watnick // Mol. Microbiol. – 2002. – Vol. 45. – P. 471-483.
  14. Conway, B. A. Biofilm formation and acyl-homoserine lactone production in the Burkholderia cepacia complex / B. A. Conway, V. Venu, D. Speert // Bacteriol. – 2002. – Vol. 184, N 20. – P. 5678-5685.
  15. Donlan, R. M. Biofilms: microbial life on surfaces / R. M. Donlan // Emerg. Infect. Diseases. – 2002. – Vol. 8. – P. 381-390.
  16. Miller, M. Quorum sensing in bacteria / M. Miller, B. Bassler // Annu Rev. Microbiol. – 2001. – Vol. 55. – P. 165-199.
  17. Гинцбург, А. Л. “Quorum sensing” или социальное поведение бактерий / А. Л. Гинцбург, Т. С. Ильина, Ю. М. Романова // Журн. микробиология. – 2003. – № 5. – С. 86-93.
  18. Грузина, В. Д. Коммуникативные сигналы бактерий / В. Д. Грузина // Антибиотики и химиотерапия. – 2003. – Т. 48, № 10. – С. 32-39.
  19. Ильина, Т. С. Биоплёнки как способ существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина: феномен, генетический контроль и системы регуляции их развития / Т. С. Ильина, Ю. М. Романова, А. Л. Гинцбург // Генетика. – 2004. – Т. 40, № 11. – С. 1445-1456.
  20. Кузнецов, О. Ю. Бактериальная колония как сложное организованное сообщество клеток / О. Ю. Кузнецов // Журн. микробиология. – 2005. – № 2. – С. 3-7.
  21. Смирнова, Н. И. Эволюция геномов патогенных холерных вибрионов / Н. И. Смирнова, В. В. Кутырев // Молекулярная генетика. – 2004. – № 4. – С. 3-10.
  22. Use in-biofilm expresson technology to identify genes volved in Pseudomonas aeruginosa biofilm development / A. Finelli [et al.] // J. Bacteriol. – 2003. – Vol. 185. – P. 2700-2710.
  23. Kolenbrander, P. Communication among oral bacteria / P. Kolenbrander, R. Andersen, D. Blehert // Microb. Molecular Biology Rev. – 2002. – Vol. 66, N 3. – P. 486-505.
  24. Pseudomonas aeruginosa displays multiple phenotypes during development as a biofilm / K. Sauer [et al.] // J. Bacteriol. – 2002. – Vol. 11. – P. 1140-1154.
  25. Романова, Ю. M. Цитокины – возможные активато­ры роста патогенных бактерий / Ю. М. Романова, А. Л. Гинцбург // Вестн. РАМН. – 2000. – № 1. – С. 13-17.
  26. Biofilms as complex differentiated communities / P. Stoodley [et al.] // Annu. Rev. Microbiol. – 2002. – Vol. 56. – P. 187-209.
  27. Harriott, M. M. Candida albicans and Staphylococcus aureus Form Polymicrobial Biofilms: Effects on Antimicrobial Resistance / M. M. Harriott, M. C. Noverr // Antimicrobial agents and chemotherapy. – 2009. – Vol. 53. – P. 3914-3922.
  28. Влияние микробных метаболитов на активность каталазы и рост S. aureus 6538 р / О. В. Бухарин [и др.] // Бюл. эксперим. биол. мед. – 2000. – № 7. – С. 80-82.
  29. О Toole, G. A. Biofilm formation as microbial development / G. A. О Toole, H. Kaplan, R. Kolter // Annu. Rev. Microbiol. – 2000. – Vol. 54. – P. 49-79.
  30. Davey, M. E. Microbial biofilms: from ecology to molecular genetics / M. E. Davey, G. A. O Toole // Microbiol. Mol. Biol. Reviews. – 2000. – Vol. 64. – P. 847-867.
  31. Donlan, R. M. Biofilms: survival mecha­nisms of clinically relevant microorganisms / R. M. Donlan, J. W. Costerton // Clin. Microbiol. Rev. – 2002. – Vol. 15. – P. 167-193.
  32. Mylonakis, E. The Enterococcus faecalis fsr B gene, a key component of the fsr quorum-sensing system, is associated with virulence in the rabbit endophthalmitis model / E. Mylonakis, M. Engelbert, X. Qin // Infect. Immun. – 2002. – Vol. 70, N 8. – P. 4678-4681.
  33. Zips, A. G. Ultrasound as a means ofdetaching biofilms / A. G. Zips, A. A. Schaule, H. С. Flemming // Biofouling. – 1990. – Vol. 2. – P. 323-333.
  34. Kato, J. Control by A-factor of a metal-loendopeptidase gene involved in aerial mycelium formation in Streptomyces griseus / J. Kato, A. Suzuki, H. Yamazaki // Ibid. – 2002. – Vol. 184, N 21. – P. 6016-6025.
  35. Complex regulatory network controls initial adhesion and biofilm formation in Escherichia coli via regulation of the csd D gene / C. Prigent-Comharet [et al.] // J. Bacteriol. – 2001. – Vol. 183. – P. 7213-7223.
  36. Parkins, M. D. Pseudomonas aeruginosa Gac A, a factor in multihost virulence, is also essential for biofilm formation / M. D. Parkins, H. Ceri, D. G Storey // Mol. Microbiol. – 2001. – Vol. 40. – P. 1215-1226.
  37. O Toole, G. A. The glob carbon metabolism regulator Crc is a component of signal transduction pathway required for biofilm deve opment by Pseudomonas aeruginosa / G. A. O Toole, A. K. Gibbs, P. W. Hager // J. Bacteriol. – 2000. – Vol. 182. – P. 425-431.
  38. Chatterjee, A. Rsm A and the quorum-sensing sig­nal, N-[3-oxohexanoyl]-L-homoserine lactone, control the levels of rsm В RNA in Erwinia carotovora subsp. carotovora by affecting its stability / A Chatterjee, Y. Cui, A. K. Chatterjee // J. Bacteriol. – 2002 – Vol. 184, N 15. – P. 4089-4095.
  39. Duan, K. Modulation of Pseudomonas aeruginosa gene expression by host mi­croflora through interspecies communication / K Duan // Mol. Microbiol. – 2003. – Vol. 50. – P. 1477-1491.
  40. Nonenzymatic turnover of an Erwinia carotovora quorum-sensing signaling molecule / J. Byers [et al.] // J. Bacteriol. – 2002. – Vol. 184, N 4. – P. 1163-1171.
  41. Effects of ultrasonic treatment on the efficacy of gentamicin against established Pseudomonas aeruginosa biofilms / C. T. Huang // Colloids Surfaces В Biointerfaces. – 1996. – Vol. 6. – P. 235-242.
  42. Прозоров, А. А. Феромоны компетентности у бактерий / А. А. Прозоров // Микробиология. – 2001. – Т. 70, № 1. – С. 5-14.
  43. О Toole, G. A. То build a biofilm / G. A. О Toole // J. Bacteriol. 2003. – Vol. 185. – P. 2687-2689.
  44. Conlon, K. M. IcaR encodes a transcriptional repressor involved in environmental regulation of ica operon expression and biofilm formation by Staphylococcus epidermis / K. M. Conlon // J. Bacteriol. – 2002. – Vol. 184. – P. 4400-4408.
  45. A quorum sensing signaling system essential for genetic competence in Streptococcus mutants is involved in biofilm formation / Y. H. Li [et al.] // J. Bacteriol. – 2002. – Vol. 184. – P. 2699-2708.
  46. AHA, an enzyme that inactivates the acyl-homoserine lactone quorum-sensing signal and attenuates the virulence of Erwinia carotovora / Y. Dong [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. – 2000. – Vol. 97, N 7. – P. 3526-3531.
  47. Davey, M. E. Rhamnolipid surfactant production affects biofilm architecture in Pseudomonas aeruginosa II / M. E. Davey, N. C. Caiazza, G. A. OToole // J. Bacteriol. – 2003. – Vol. 185. – P. 1027-1036.
  48. Blenkinsopp, S. A. Electrical enhancement of biocide efficacy against Pseudomonas aeruginosa biofilms / S. A. Blenkinsopp, A. E. Khoury, J. W. Costerton // Appl. Environ. Microbiol. – 1992. – Vol. 58. – P. 3770-3773.
  49. Johansen, C.P. Enzymatic removal and disinfection of bacterial biofilms / C. P. Johansen, P. Falholt, L. Gram // Appl. Environ. Microbiol. – 1997. – Vol. 63. – P. 3724-3728.
  50. Quorum sensing signals indicate that cystic fibrosis lungs are in­fected with bacterial biofilms / P. K. Singh [et al.] // Nature. – 2000. – Vol. 407. – P. 762-764.
Адрес для корреспонденции:
660022, Российская Федерация, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, д. 1, Медицинский университет, кафедра общей хирургии,
e-mail: yuvinnik@yandex.ru, Винник Ю.С.
Контакты | ©Витебский государственный медицинский университет, 2007-2023